unojУспехи наук о животныхErnst Journal of Animal Science3034-493ХФедеральный исследовательский центр животноводства – ВИЖ имени академика Л.К. Эрнста10.25687/3034-493X.2026.7.2.001unoj-40Research ArticleБИОЛОГИЧЕСКИЕ НАУКИBIOLOGICAL SCIENCESПрименение микросателлитного анализа для генетических исследований осетровых рыбMicrosatellite markers in sturgeon aquacultureНикипеловаА. К.NikipelovaA. K.

Московская обл.

Moscow Region

БардуковН. В.BardukovN. V.

Московская обл.

Moscow Region

ДоцевА. В.DotsevA. V.

Московская обл.

Moscow Region

НикипеловВ. И.NikipelovV. I.

Московская обл.

Moscow Region

ФГБНУ ФИЦ ВИЖ им. Л.К. ЭрнстаРоссияL.K. Ernst Federal Research Center for Animal HusbandryRussian Federation20260408202602429Copyright © Никипелова А.К., Бардуков Н.В., Доцев А.В., Никипелов В.И., 20262026Никипелова А.К., Бардуков Н.В., Доцев А.В., Никипелов В.И.Nikipelova A.K., Bardukov N.V., Dotsev A.V., Nikipelov V.I.Данная работа распространяется под лицензией Creative Commons Attribution 4.0.This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 License.https://www.ernstjournal.ru/jour/article/view/40

Настоящий обзор посвящен систематизации данных о применении микросателлитных (STR) маркеров в осетроводстве. Рассмотрены структура, классификация и механизмы возникновения полиморфизма микросателлитных локусов, а также факторы, влияющие на их изменчивость. Обсуждается, что распределение различных классов микросателлитов в геномах рыб носит видоспецифичный характер, что необходимо учитывать при кросс-видовой амплификации праймеров. Особое внимание уделено двум уникальным характеристикам геномов осетровых. Вопервых, полиплоидии: виды с ~120 хромосомами являются функциональными диплоидами, с ~250 функциональными тетраплоидами, с ~370 гексаплоидами. Процесс диплоидизации носит незавершенный характер, что требует учета количественного соотношения аллелей и валидации типа наследования каждого локуса. Во-вторых, крайне низкой скорости молекулярной эволюции, которая обеспечивает высокую эффективность кросс-видовой амплификации, но затрудняет дифференциацию близкородственных видов. Систематизированы основные направления применения STR-маркеров: контроль генетического разнообразия природных популяций, управление генетическим разнообразием в аквакультуре, идентификация гибридов, установление достоверности происхождения, изучение плоидности и процессов диплоидизации. Приведены примеры успешного использования микросателлитов в исследованиях отечественных и зарубежных авторов, включая разработку мультиплексных панелей и статистических подходов с учетом дозы аллелей для полиплоидных видов. Микросателлитные маркеры являются надежным средством популяционно-генетического анализа, селекционно-племенной работы и сохранения генетических ресурсов осетровых. Перспективными направлениями остаются разработка новых мультиплексных панелей для тетраплоидных видов и интеграция STR-анализа с современными геномными технологиями. 

This review systematizes data on the use of microsatellite (STR) markers in sturgeon farming. The structure, classification, and mechanisms underlying polymorphism of microsatellite loci, as well as the factors affecting their variability, are considered. It is discussed that the distribution of various classes of microsatellites in fish genomes is species-specific, which must be taken into account during cross-species primer amplification. Particular attention is paid to two unique characteristics of sturgeon genomes. First, polyploidy: species with ~120 chromosomes are functional diploids, those with ~250 are functional tetraploids, and those with ~370 are hexaploids. The diploidization process is incomplete, requiring consideration of the quantitative ratio of alleles and validation of the inheritance mode for each locus. Secondly, the extremely low rate of molecular evolution ensures high efficiency of cross-species amplification but complicates the differentiation of closely related species. The main applications of STR markers are systematized: monitoring the genetic diversity of natural populations, managing genetic diversity in aquaculture, identifying hybrids, establishing the authenticity of origin, and studying ploidy and diploidization processes. Examples of the successful use of microsatellites in studies conducted by domestic and international researchers are provided, including the development of multiplex panels and statistical approaches accounting for allele dosage in polyploid species. Microsatellite markers are a reliable tool for population genetic analysis, selection and breeding, and the conservation of sturgeon genetic resources. Promising areas remain the development of new multiplex panels for tetraploid species and the integration of STR analysis with modern genomic technologies. 

микросателлитыSTR-маркерыосетровыеAcipenseridaeполиплоидиягенетическое разнообразиеинбридинггибридизациядиплоидизацияаквакультураmicrosatellitesSTR markerssturgeonsAcipenseridaepolyploidygenetic diversityinbreedinghybridizationdiploidisationaquacultureReferencesBemis W.E., Birstein V.J., Waldman J.R. Sturgeon biodiversity and conservation: An introduction // Environmental Biology of Fishes. 1997. Vol. 48. P. 13 14. DOI: 10.1023/A:1007302810254.Bemis W.E., Birstein V.J., Waldman J.R. Sturgeon biodiversity and conservation: An introduction // Environmental Biology of Fishes. 1997. Vol. 48. P. 13 14. DOI: 10.1023/A:1007302810254.Krieger J., Fuerst P.A. Evidence of multiple alleles of the nuclear 18S ribosomal RNA gene in sturgeon (Family: Acipenseridae) // J. of Applied Ichthyology. 2002. Vol. 18. P. 290 297. DOI: 10.1046/j.1439-0426.2002.00377.xKrieger J., Fuerst P.A. Evidence of multiple alleles of the nuclear 18S ribosomal RNA gene in sturgeon (Family: Acipenseridae) // J. of Applied Ichthyology. 2002. Vol. 18. P. 290 297. DOI: 10.1046/j.1439-0426.2002.00377.xDu K., Stock M., Kneitz S. et al. The sterlet sturgeon genome sequence and the mechanisms of segmental rediploidization // Nature Ecology & Evolution. 2020. Vol. 4. P. 841 852. DOI: 10.1038/s41559-020-1166-x.Du K., Stock M., Kneitz S. et al. The sterlet sturgeon genome sequence and the mechanisms of segmental rediploidization // Nature Ecology & Evolution. 2020. Vol. 4. P. 841 852. DOI: 10.1038/s41559-020-1166-x.Billard R., Lecointre G. Biology and conservation of sturgeon and paddlefish / // Reviews in Fish Biology and Fisheries. 2001. Vol. 10. P. 355 392.Billard R., Lecointre G. Biology and conservation of sturgeon and paddlefish / // Reviews in Fish Biology and Fisheries. 2001. Vol. 10. P. 355 392.Cooke S.J., Cech J.J., Glassman D.M. et al. Water resource development and sturgeon (Acipenseridae): state of the science and research gaps related to fish passage, entrainment, impingement and behavioural guidance // Reviews in Fish Biology and Fisheries. 2020. Vol. 30. DOI: 10.1007/s11160-020-09596-x.Cooke S.J., Cech J.J., Glassman D.M. et al. Water resource development and sturgeon (Acipenseridae): state of the science and research gaps related to fish passage, entrainment, impingement and behavioural guidance // Reviews in Fish Biology and Fisheries. 2020. Vol. 30. DOI: 10.1007/s11160-020-09596-x.Friedrich T. Danube Sturgeons: Past and Future // Riverine Ecosystem Management / Eds. S. Schmutz, J. Sendzimir. Cham: Springer, 2018. Vol. 8. (Aquatic Ecology Series). DOI: 10.1007/978-3-319-73250-3_26.Friedrich T. Danube Sturgeons: Past and Future // Riverine Ecosystem Management / Eds. S. Schmutz, J. Sendzimir. Cham: Springer, 2018. Vol. 8. (Aquatic Ecology Series). DOI: 10.1007/978-3-319-73250-3_26.Anders P.J., Schreier A., Rodzen J. et al. A review of genetic evaluation tools for conservation and management of North American sturgeons: Roles, benefits, and limitations // J. of Applied Ichthyology. 2011. Vol. 27. P. 3 11. DOI: 10.1111/j.1439-0426.2011.01830.x.Anders P.J., Schreier A., Rodzen J. et al. A review of genetic evaluation tools for conservation and management of North American sturgeons: Roles, benefits, and limitations // J. of Applied Ichthyology. 2011. Vol. 27. P. 3 11. DOI: 10.1111/j.1439-0426.2011.01830.x.Frankham R. Conservation genetics // Annual Review of Genetics. 1995. Vol. 29. P. 305 327. DOI: 10.1146/annurev.ge.29.120195.001513.Frankham R. Conservation genetics // Annual Review of Genetics. 1995. Vol. 29. P. 305 327. DOI: 10.1146/annurev.ge.29.120195.001513.Kjartanson S.L., Haxton T., Smith K., Lovejoy N., Wilson C.C. Conservation Genetics of Lake Sturgeon (Acipenser fulvescens): Nuclear Phylogeography Drives Contemporary Patterns of Genetic Structure and Diversity // Diversity. 2023. Vol. 15. P. 385. DOI: 10.3390/d15030385.Kjartanson S.L., Haxton T., Smith K., Lovejoy N., Wilson C.C. Conservation Genetics of Lake Sturgeon (Acipenser fulvescens): Nuclear Phylogeography Drives Contemporary Patterns of Genetic Structure and Diversity // Diversity. 2023. Vol. 15. P. 385. DOI: 10.3390/d15030385.Nazari S., Pourkazemi M. Current status and recent advancements in DNA molecular markers in population genetics of Caspian Sea sturgeons: A review // Regional Studies in Marine Science. 2023. DOI: 10.1016/j.rsma.2023.103034.Nazari S., Pourkazemi M. Current status and recent advancements in DNA molecular markers in population genetics of Caspian Sea sturgeons: A review // Regional Studies in Marine Science. 2023. DOI: 10.1016/j.rsma.2023.103034.May B., Krueger C.C., Kincaid H.L. Genetic variation at microsatellite loci in sturgeon: Primer sequence homology in Acipenser and Scaphirhynchus // Canadian J. of Fisheries and Aquatic Sciences. 1997. Vol. 54, № 7. P. 1542 1547. DOI: 10.1139/cjfas-54-7-1542.May B., Krueger C.C., Kincaid H.L. Genetic variation at microsatellite loci in sturgeon: Primer sequence homology in Acipenser and Scaphirhynchus // Canadian J. of Fisheries and Aquatic Sciences. 1997. Vol. 54, № 7. P. 1542 1547. DOI: 10.1139/cjfas-54-7-1542.Panagiotopoulou H., Popovic D., Zalewska K. Microsatellite multiplex assay for the analysis of Atlantic sturgeon populations // J. of Applied Genetics. 2014. Vol. 55, № 4. P. 505 510. DOI: 10.1007/s13353-014-0216-y.Panagiotopoulou H., Popovic D., Zalewska K. Microsatellite multiplex assay for the analysis of Atlantic sturgeon populations // J. of Applied Genetics. 2014. Vol. 55, № 4. P. 505 510. DOI: 10.1007/s13353-014-0216-y.Congiu L., Fontana F., Patarnello T., Rossi R., Zane L. The use of AFLP in sturgeon identification // J. of Applied Ichthyology. 2002. Vol. 18. P. 286 289. DOI: 10.1046/j.14390426.2002.00376.x.Congiu L., Fontana F., Patarnello T., Rossi R., Zane L. The use of AFLP in sturgeon identification // J. of Applied Ichthyology. 2002. Vol. 18. P. 286 289. DOI: 10.1046/j.14390426.2002.00376.x.Pourkazemi M., Skibinski D.O.F., Beardmore J.A. Application of mtDNA D-loop region for the study of Russian sturgeon population structure from Iranian coastline of the Caspian Sea // J. of Applied Ichthyology. 2007. Vol. 15. P. 23 28. DOI: 10.1111/j.1439-0426.1999.tb00199.x.Pourkazemi M., Skibinski D.O.F., Beardmore J.A. Application of mtDNA D-loop region for the study of Russian sturgeon population structure from Iranian coastline of the Caspian Sea // J. of Applied Ichthyology. 2007. Vol. 15. P. 23 28. DOI: 10.1111/j.1439-0426.1999.tb00199.x.Ludwig A. Identification of Acipenseriformes in trade // J. of Applied Ichthyology. 2008. Vol. 24. P. 2 19. DOI: 10.1111/j.1439-0426.2008.01085.x.Ludwig A. Identification of Acipenseriformes in trade // J. of Applied Ichthyology. 2008. Vol. 24. P. 2 19. DOI: 10.1111/j.1439-0426.2008.01085.x.16. Ludwig A., Belfiore N.M., Pitra C. et al. Genome duplication events and functional reduction of ploidy levels in sturgeon (Acipenser, Huso and Scaphirhynchus) // Genetics. 2001. Vol. 158, № 3. P. 1203 1215. DOI: 10.1093/genetics/158.3.1203.16. Ludwig A., Belfiore N.M., Pitra C. et al. Genome duplication events and functional reduction of ploidy levels in sturgeon (Acipenser, Huso and Scaphirhynchus) // Genetics. 2001. Vol. 158, № 3. P. 1203 1215. DOI: 10.1093/genetics/158.3.1203.Rajkov J., Shao Z., Berrebi P. Evolution of Polyploidy and Functional Diploidization in Sturgeons: Microsatellite Analysis in 10 Sturgeon Species // J. of Heredity. 2014. Vol. 105, № 4. P. 521 531. DOI: 10.1093/jhered/esu027.Rajkov J., Shao Z., Berrebi P. Evolution of Polyploidy and Functional Diploidization in Sturgeons: Microsatellite Analysis in 10 Sturgeon Species // J. of Heredity. 2014. Vol. 105, № 4. P. 521 531. DOI: 10.1093/jhered/esu027.Havelka M., Hulák M., Bailie D.A., Prodohl P.A., Flajshans M. Extensive genome duplications in sturgeons: New evidence from microsatellite data // J. of Applied Ichthyology. 2013. Vol. 29. P. 704 708. DOI: 10.1111/jai.12224.Havelka M., Hulák M., Bailie D.A., Prodohl P.A., Flajshans M. Extensive genome duplications in sturgeons: New evidence from microsatellite data // J. of Applied Ichthyology. 2013. Vol. 29. P. 704 708. DOI: 10.1111/jai.12224.Барминцева А.Е., Мюге Н.С. Генетический полиморфизм сибирского осетра Acipenser baerii Brandt, 1869 в аквакультуре // Генетика. 2018. Т. 54, № 2. С. 216 223. DOI: 10.7868/S0016675818020030.Барминцева А.Е., Мюге Н.С. Генетический полиморфизм сибирского осетра Acipenser baerii Brandt, 1869 в аквакультуре // Генетика. 2018. Т. 54, № 2. С. 216 223. DOI: 10.7868/S0016675818020030.Dudu A., Samu M., Maereanu M., Georgescu S.E. A Multistep DNA-Based Methodology for Accurate Authentication of Sturgeon Species // Foods. 2022. Vol. 11. P. 1007. DOI: 10.3390/foods11071007.Dudu A., Samu M., Maereanu M., Georgescu S.E. A Multistep DNA-Based Methodology for Accurate Authentication of Sturgeon Species // Foods. 2022. Vol. 11. P. 1007. DOI: 10.3390/foods11071007.Eckert K.A., Hile S.E. Every microsatellite is different: Intrinsic DNA features dictate mutagenesis of common microsatellites present in the human genome // Molecular Carcinogenesis. 2009. Vol. 48, № 4. P. 379 388.Eckert K.A., Hile S.E. Every microsatellite is different: Intrinsic DNA features dictate mutagenesis of common microsatellites present in the human genome // Molecular Carcinogenesis. 2009. Vol. 48, № 4. P. 379 388.22. International Human Genome Sequencing Consortium. Initial sequencing and analysis of the human genome // Nature. 2001. Vol. 409. P. 860 921.22. International Human Genome Sequencing Consortium. Initial sequencing and analysis of the human genome // Nature. 2001. Vol. 409. P. 860 921.Subramanian S., Mishra R.K., Singh L. Genome-wide analysis of microsatellite repeats in humans: their abundance and density in specific genomic regions // Genome Biology. 2003. Vol. 4. Art. R13.Subramanian S., Mishra R.K., Singh L. Genome-wide analysis of microsatellite repeats in humans: their abundance and density in specific genomic regions // Genome Biology. 2003. Vol. 4. Art. R13.Алтухов Ю.П., Салменкова Е.А. Полиморфизм ДНК в популяционной генетике // Генетика. 2002. Т. 38, № 9. С. 1173 1195.Алтухов Ю.П., Салменкова Е.А. Полиморфизм ДНК в популяционной генетике // Генетика. 2002. Т. 38, № 9. С. 1173 1195.Ellegren H. Microsatellites: simple sequences with complex evolution // Nature Reviews Genetics. 2004. Vol. 5. P. 435 445.Ellegren H. Microsatellites: simple sequences with complex evolution // Nature Reviews Genetics. 2004. Vol. 5. P. 435 445.Khlopova N.S., Glazko T. T., Glazko V. I. Constitutive and variable components of gene expression profiles in pig liver // Russian J. of Genetics: Applied Research. 2011. Vol. 1. P. 302 307.Khlopova N.S., Glazko T. T., Glazko V. I. Constitutive and variable components of gene expression profiles in pig liver // Russian J. of Genetics: Applied Research. 2011. Vol. 1. P. 302 307.Avvaru A.K., Sharma D., Verma A. et al. MSDB: a comprehensive, annotated database of microsatellites // Nucleic Acids Research. 2020. Vol. 48, № D1. P. D155 D159.Avvaru A.K., Sharma D., Verma A. et al. MSDB: a comprehensive, annotated database of microsatellites // Nucleic Acids Research. 2020. Vol. 48, № D1. P. D155 D159.Alba M.M., Guigo R. Comparative analysis of amino acid repeats in rodents and humans // Genome Research. 2004. Vol. 14. P. 549 554.Alba M.M., Guigo R. Comparative analysis of amino acid repeats in rodents and humans // Genome Research. 2004. Vol. 14. P. 549 554.Gharesouran J., Hosseinzadeh H., Ghafouri-Fard S. et al. STRs: ancient architectures of the genome beyond the sequence // J. of Molecular Neuroscience. 2021. Vol. 71, № 12. P. 2441 2455.Gharesouran J., Hosseinzadeh H., Ghafouri-Fard S. et al. STRs: ancient architectures of the genome beyond the sequence // J. of Molecular Neuroscience. 2021. Vol. 71, № 12. P. 2441 2455.Глазко В.И., Косовский Г.Ю., Глазко Т.Т., Федорова Л.М. ДНК маркеры и «микросателлитный код»: (обзор) // С.-х. биология. 2023. Т. 58, № 2. С. 223 248.Глазко В.И., Косовский Г.Ю., Глазко Т.Т., Федорова Л.М. ДНК маркеры и «микросателлитный код»: (обзор) // С.-х. биология. 2023. Т. 58, № 2. С. 223 248.Li Y.C., Korol A.B., Fahima T., Nevo E. Microsatellites within genes: structure, function, and evolution // Molecular Biology and Evolution. 2004. Vol. 21. P. 991 1007.Li Y.C., Korol A.B., Fahima T., Nevo E. Microsatellites within genes: structure, function, and evolution // Molecular Biology and Evolution. 2004. Vol. 21. P. 991 1007.Hui J., Hung L.H., Heiner M. et al. Intronic CA-repeat and CA-rich elements: a new class of regulators of mammalian alternative splicing // The EMBO Journal. 2005. Vol. 24, № 11. P. 1988 1998.Hui J., Hung L.H., Heiner M. et al. Intronic CA-repeat and CA-rich elements: a new class of regulators of mammalian alternative splicing // The EMBO Journal. 2005. Vol. 24, № 11. P. 1988 1998.Kashi Y., King D.G. Simple sequence repeats as advantageous mutators in evolution // Trends in Genetics. 2006. Vol. 22. P. 253 259.Kashi Y., King D.G. Simple sequence repeats as advantageous mutators in evolution // Trends in Genetics. 2006. Vol. 22. P. 253 259.Li Y. C., Korol A.B., Fahima T. et al. Microsatellites: genomic distribution, putative functions and mutational mechanisms: a review // Molecular Ecology. 2002. Vol. 11. P. 2453 2465.Li Y. C., Korol A.B., Fahima T. et al. Microsatellites: genomic distribution, putative functions and mutational mechanisms: a review // Molecular Ecology. 2002. Vol. 11. P. 2453 2465.Richard G.F., Paques F. Miniand microsatellite expansions: the recombination connection // EMBO Reports. 2000. Vol. 1, № 2. P. 122 126.Richard G.F., Paques F. Miniand microsatellite expansions: the recombination connection // EMBO Reports. 2000. Vol. 1, № 2. P. 122 126.Szostak J.W., Orr-Weaver T.L., Rothstein R.J., Stahl F.W. The double-strand break repair model for recombination // Cell. 1983. Vol. 33. P. 25 35.Szostak J.W., Orr-Weaver T.L., Rothstein R.J., Stahl F.W. The double-strand break repair model for recombination // Cell. 1983. Vol. 33. P. 25 35.Ellegren H. Microsatellite mutations in the germline: implications for evolutionary inference // Trends in Genetics. 2000. Vol. 16. P. 551 558.Ellegren H. Microsatellite mutations in the germline: implications for evolutionary inference // Trends in Genetics. 2000. Vol. 16. P. 551 558.Katti M.V., Ranjekar P.K., Gupta V.S. Differential distribution of simple sequence repeats in eukaryotic genome sequences // Molecular Biology and Evolution. 2001. Vol. 18. P. 1161 1167.Katti M.V., Ranjekar P.K., Gupta V.S. Differential distribution of simple sequence repeats in eukaryotic genome sequences // Molecular Biology and Evolution. 2001. Vol. 18. P. 1161 1167.Brinkmann B., Klintschar M., Neuhuber F. et al. Mutation rate in human microsatellites: influence of the structure and length of the tandem repeat // American J. of Human Genetics. 1998. Vol. 62. P. 1408 1415.Brinkmann B., Klintschar M., Neuhuber F. et al. Mutation rate in human microsatellites: influence of the structure and length of the tandem repeat // American J. of Human Genetics. 1998. Vol. 62. P. 1408 1415.Lai Y., Sun F. The relationship between microsatellite slippage mutation rate and the number of repeat units // Molecular Biology and Evolution. 2003. Vol. 20. P. 2123 2131.Lai Y., Sun F. The relationship between microsatellite slippage mutation rate and the number of repeat units // Molecular Biology and Evolution. 2003. Vol. 20. P. 2123 2131.Kayser M., Roewer L., Hedman M. et al. Characteristics and frequency of germline mutations at microsatellite loci from the human Y chromosome, as revealed by direct observation in father/son pairs // American J. of Human Genetics. 2000. Vol. 66. P. 1580 1588.Kayser M., Roewer L., Hedman M. et al. Characteristics and frequency of germline mutations at microsatellite loci from the human Y chromosome, as revealed by direct observation in father/son pairs // American J. of Human Genetics. 2000. Vol. 66. P. 1580 1588.Lei Y., Zhou Y., Price M., Song Z. Genome-wide characterization of microsatellite DNA in fishes: survey and analysis of their abundance and frequency in genome-specific regions // BMC Genomics. 2021. Vol. 22. Art. 421.Lei Y., Zhou Y., Price M., Song Z. Genome-wide characterization of microsatellite DNA in fishes: survey and analysis of their abundance and frequency in genome-specific regions // BMC Genomics. 2021. Vol. 22. Art. 421.Moghim M., Tan S., Pourkazemi M. et al. Isolation and characterization of microsatellite loci in the Persian sturgeon (Acipenser persicus, Borodine, 1897) and cross-species amplification in four commercial sturgeons from the Caspian Sea // Iranian J. of Fisheries Sciences. 2012. Vol. 11, № 3. P. 548 558.Moghim M., Tan S., Pourkazemi M. et al. Isolation and characterization of microsatellite loci in the Persian sturgeon (Acipenser persicus, Borodine, 1897) and cross-species amplification in four commercial sturgeons from the Caspian Sea // Iranian J. of Fisheries Sciences. 2012. Vol. 11, № 3. P. 548 558.Vasil’ev V.P. Mechanisms of Polyploid Evolution in Fish: Polyploidy in Sturgeons // Biology, Conservation and Sustainable Development of Sturgeons / eds. R. Carmona et al. Dordrecht: Springer, 2009. Vol. 29 (Fish & Fisheries Series). P. 97 117. DOI: 10.1007/978-1-4020-8437-9_6.Vasil’ev V.P. Mechanisms of Polyploid Evolution in Fish: Polyploidy in Sturgeons // Biology, Conservation and Sustainable Development of Sturgeons / eds. R. Carmona et al. Dordrecht: Springer, 2009. Vol. 29 (Fish & Fisheries Series). P. 97 117. DOI: 10.1007/978-1-4020-8437-9_6.Trifonov V.A., Romanenko S.S., Beklemisheva V.R. et al. Evolutionary plasticity of acipenseriform genomes // Chromosoma. 2016. Vol. 125, № 4. P. 661668. DOI: 10.1007/s00412-016-0609-2.Trifonov V.A., Romanenko S.S., Beklemisheva V.R. et al. Evolutionary plasticity of acipenseriform genomes // Chromosoma. 2016. Vol. 125, № 4. P. 661668. DOI: 10.1007/s00412-016-0609-2.Symonova R., Havelka M., Amemiya C.T. et al. Molecular cytogenetic differentiation of paralogs of Hox paralogs in duplicated and rediploidized genome of the North American paddlefish (Polyodon spathula) // BMC Genetics. 2017. Vol. 18, № 1. P. 19. DOI: 10.1186/s12863-017-0484-8.Symonova R., Havelka M., Amemiya C.T. et al. Molecular cytogenetic differentiation of paralogs of Hox paralogs in duplicated and rediploidized genome of the North American paddlefish (Polyodon spathula) // BMC Genetics. 2017. Vol. 18, № 1. P. 19. DOI: 10.1186/s12863-017-0484-8.Shedko S.V. Molecular Dating of Phylogeny of Sturgeons (Acipenseridae) Based on Total Evidence Analysis // Russian J. of Genetics. 2022. Vol. 58, № 6. P. 718 729. DOI: 10.1134/S1022795422060084.Shedko S.V. Molecular Dating of Phylogeny of Sturgeons (Acipenseridae) Based on Total Evidence Analysis // Russian J. of Genetics. 2022. Vol. 58, № 6. P. 718 729. DOI: 10.1134/S1022795422060084.Du K., Stock M., Kneitz S. et al. The sterlet sturgeon genome sequence and the mechanisms of segmental rediploidization // Nature Ecology & Evolution. 2020. Vol. 4. P. 841 852. DOI: 10.1038/s41559-020-1166-x.Du K., Stock M., Kneitz S. et al. The sterlet sturgeon genome sequence and the mechanisms of segmental rediploidization // Nature Ecology & Evolution. 2020. Vol. 4. P. 841 852. DOI: 10.1038/s41559-020-1166-x.Hilton E.J., Grande L. Review of the fossil record of sturgeons, family Acipenseridae (Actinopterygii: Acipenseriformes), from North America // J. of Paleontology. 2006. Vol. 80. P. 672 683.Hilton E.J., Grande L. Review of the fossil record of sturgeons, family Acipenseridae (Actinopterygii: Acipenseriformes), from North America // J. of Paleontology. 2006. Vol. 80. P. 672 683.Барминцева А.Е., Мюге Н.С. Природный генетический полиморфизм и филогеография сибирского осетра Acipenser baerii Brandt, 1869 // Генетика. 2017. Т. 53, № 3. С. 345 355. DOI: 10.7868/S001667581703002X.Барминцева А.Е., Мюге Н.С. Природный генетический полиморфизм и филогеография сибирского осетра Acipenser baerii Brandt, 1869 // Генетика. 2017. Т. 53, № 3. С. 345 355. DOI: 10.7868/S001667581703002X.Savoy T., Maceda L., Roy N.K. et al. Evidence of natural reproduction of Atlantic sturgeon in the Connecticut River from unlikely sources // PLoS One. 2017. Vol. 12, № 4. e0175085. DOI: 10.1371/journal.pone.0175085.Savoy T., Maceda L., Roy N.K. et al. Evidence of natural reproduction of Atlantic sturgeon in the Connecticut River from unlikely sources // PLoS One. 2017. Vol. 12, № 4. e0175085. DOI: 10.1371/journal.pone.0175085.King T.L., Henderson A.P., Kynard B.E. et al. A nuclear DNA perspective on delineating evolutionarily significant lineages in polyploids: the case of the endangered shortnose sturgeon (Acipenser brevirostrum) // PLoS One. 2014. Vol. 9, № 8. e102784. DOI: 10.1371/journal.pone.0102784.King T.L., Henderson A.P., Kynard B.E. et al. A nuclear DNA perspective on delineating evolutionarily significant lineages in polyploids: the case of the endangered shortnose sturgeon (Acipenser brevirostrum) // PLoS One. 2014. Vol. 9, № 8. e102784. DOI: 10.1371/journal.pone.0102784.King T.L., Lubinski B.A., Spidle A.P. Microsatellite DNA variation in Atlantic sturgeon (Acipenser oxyrinchus oxyrinchus) and cross-species amplification in Acipenseridae // Conservation Genetics. 2001. Vol. 2. P. 103 119. DOI: 10.1023/A:1011895429669.King T.L., Lubinski B.A., Spidle A.P. Microsatellite DNA variation in Atlantic sturgeon (Acipenser oxyrinchus oxyrinchus) and cross-species amplification in Acipenseridae // Conservation Genetics. 2001. Vol. 2. P. 103 119. DOI: 10.1023/A:1011895429669.Farrae D.J., Post W.C., Darden T.L. Genetic characterization of Atlantic sturgeon, Acipenser oxyrinchus oxyrinchus, in the Edisto River, South Carolina and identification of genetically discrete fall and spring spawning // Conservation Genetics. 2017. Vol. 18. P. 813 823. DOI: 10.1007/s10592-017-0929-7.Farrae D.J., Post W.C., Darden T.L. Genetic characterization of Atlantic sturgeon, Acipenser oxyrinchus oxyrinchus, in the Edisto River, South Carolina and identification of genetically discrete fall and spring spawning // Conservation Genetics. 2017. Vol. 18. P. 813 823. DOI: 10.1007/s10592-017-0929-7.Daigle N.J., White S., Lubinski B.A. et al. Stock composition of cryptic Atlantic sturgeon (Acipenser oxyrinchus oxyrinchus) in the Restigouche River and Ludestuary, Canada // Scientific Reports. 2025. Vol. 15, № 1. P. 20654. DOI: 10.1038/s41598-025-04551-x.Daigle N.J., White S., Lubinski B.A. et al. Stock composition of cryptic Atlantic sturgeon (Acipenser oxyrinchus oxyrinchus) in the Restigouche River and Ludestuary, Canada // Scientific Reports. 2025. Vol. 15, № 1. P. 20654. DOI: 10.1038/s41598-025-04551-x.Price M.E., Kreiser B., Randall M.T. New insights reveal a temporally distinct two-stock genetic structure for Suwannee River Gulf sturgeon // Endangered Species Research. 2025. Vol. 56. DOI: 10.3354/esr01418.Price M.E., Kreiser B., Randall M.T. New insights reveal a temporally distinct two-stock genetic structure for Suwannee River Gulf sturgeon // Endangered Species Research. 2025. Vol. 56. DOI: 10.3354/esr01418.White S.L., Kazyak D.C., Darden T.L., et al. Establishment of a microsatellite genetic baseline for North American Atlantic sturgeon (Acipenser o. oxyrhinchus) and range-wide analysis of population genetics // Conservation Genetics. 2021. Vol. 22. P. 977 992. DOI: 10.1007/s10592-02101390-x.White S.L., Kazyak D.C., Darden T.L., et al. Establishment of a microsatellite genetic baseline for North American Atlantic sturgeon (Acipenser o. oxyrhinchus) and range-wide analysis of population genetics // Conservation Genetics. 2021. Vol. 22. P. 977 992. DOI: 10.1007/s10592-02101390-x.Shen Z.Y., Yu D., Gao X. et al. Genetic diversity and reproductive success of a wild population of Chinese sturgeon (Acipenser sinensis) from the Yangtze River inferred from juveniles born in 2014 // Zoological Research. 2020. Vol. 41, № 4. P. 423–430. DOI: 10.24272/j.issn.20958137.2020.011.Shen Z.Y., Yu D., Gao X. et al. Genetic diversity and reproductive success of a wild population of Chinese sturgeon (Acipenser sinensis) from the Yangtze River inferred from juveniles born in 2014 // Zoological Research. 2020. Vol. 41, № 4. P. 423–430. DOI: 10.24272/j.issn.20958137.2020.011.Ludwig A., Congiu L., Pitra C. et al. Nonconcordant evolutionary history of maternal and paternal lineages in Adriatic sturgeon (Acipenser naccarii) // Molecular Ecology. 2003. Vol. 12, № 12. P. 3253 3264.Ludwig A., Congiu L., Pitra C. et al. Nonconcordant evolutionary history of maternal and paternal lineages in Adriatic sturgeon (Acipenser naccarii) // Molecular Ecology. 2003. Vol. 12, № 12. P. 3253 3264.Fazekas G., Kovács G., Sándor Z. et al. Genetic Characterization of Endangered Sterlet (Acipenser ruthenus, Linnaeus 1758) Gene Bank Broodstock, Natural and Cultured Populations in Hungary // Fishes. 2024. Vol. 9. P. 201. DOI: 10.3390/fishes9060201.Fazekas G., Kovács G., Sándor Z. et al. Genetic Characterization of Endangered Sterlet (Acipenser ruthenus, Linnaeus 1758) Gene Bank Broodstock, Natural and Cultured Populations in Hungary // Fishes. 2024. Vol. 9. P. 201. DOI: 10.3390/fishes9060201.Holostenco D., Tošić K. Genetic population structure of the critically endangered stellate sturgeon (Acipenser stellatus) in the Black Sea basin: Implications for conservation // Aquatic Conservation: Marine and Freshwater Ecosystems. 2022. Vol. 32. DOI: 10.1002/aqc.3892.Holostenco D., Tošić K. Genetic population structure of the critically endangered stellate sturgeon (Acipenser stellatus) in the Black Sea basin: Implications for conservation // Aquatic Conservation: Marine and Freshwater Ecosystems. 2022. Vol. 32. DOI: 10.1002/aqc.3892.Kohlmann K., Kersten P., Geßner J. et al. Validation of 12 species-specific, tetrasomic microsatellite loci from the Russian sturgeon, Acipenser gueldenstaedtii, for genetic broodstock management // Aquaculture International. 2018. Vol. 26. P. 1365–1376. DOI: 10.1007/s10499-018-0290y.Kohlmann K., Kersten P., Geßner J. et al. Validation of 12 species-specific, tetrasomic microsatellite loci from the Russian sturgeon, Acipenser gueldenstaedtii, for genetic broodstock management // Aquaculture International. 2018. Vol. 26. P. 1365–1376. DOI: 10.1007/s10499-018-0290y.Харзинова В.Р., Волкова В.В., Никипелов В.И. и др. Характеристика генетической структуры аквакультурной и дикой популяций стерляди (Acipenser ruthenus Linnaeus, 1758) на основе анализа микросателлитов // С.-х. биология. 2024. Т. 59, № 4. С. 666 679. DOI: 10.15389/agrobiology.2024.4.666rus.Харзинова В.Р., Волкова В.В., Никипелов В.И. и др. Характеристика генетической структуры аквакультурной и дикой популяций стерляди (Acipenser ruthenus Linnaeus, 1758) на основе анализа микросателлитов // С.-х. биология. 2024. Т. 59, № 4. С. 666 679. DOI: 10.15389/agrobiology.2024.4.666rus.Shcherbakova V.D., Barmintseva A.E., Savchenko D.P. et al. Genetic Differentiation of Ship Sturgeon Acipenser nudiventris (Acipenseridae) Specimens from Natural Populations and Farmed Broodstocks // J. of Ichthyology. 2025. Vol. 65. P. 1236–1250. DOI: 10.1134/S0032945225600235.Shcherbakova V.D., Barmintseva A.E., Savchenko D.P. et al. Genetic Differentiation of Ship Sturgeon Acipenser nudiventris (Acipenseridae) Specimens from Natural Populations and Farmed Broodstocks // J. of Ichthyology. 2025. Vol. 65. P. 1236–1250. DOI: 10.1134/S0032945225600235.Шалгимбаева Г.М., Барминцева А.Е., Мюге Л.Н. и др. Генетическое разнообразие севрюги реки Урал // Труды ВНИРО. 2018. Т. 171. С. 95 105.Шалгимбаева Г.М., Барминцева А.Е., Мюге Л.Н. и др. Генетическое разнообразие севрюги реки Урал // Труды ВНИРО. 2018. Т. 171. С. 95 105.Алимова А.Ш., Усатов А.В., Небесихина Н.А., Мюге Н.С. Динамика природного полиморфизма русского осетра в Азовском море за двадцатилетний период использования ремонтно-маточных стад в искусственном воспроизводстве // Труды ВНИРО. 2025. Т. 201. С. 109 117. DOI: 10.36038/2307-3497-2025-201-109-117.Алимова А.Ш., Усатов А.В., Небесихина Н.А., Мюге Н.С. Динамика природного полиморфизма русского осетра в Азовском море за двадцатилетний период использования ремонтно-маточных стад в искусственном воспроизводстве // Труды ВНИРО. 2025. Т. 201. С. 109 117. DOI: 10.36038/2307-3497-2025-201-109-117.Fopp-Bayat D. Verification of meiotic gynogenesis in Siberian sturgeon (Acipenser baeri Brandt) using microsatellite DNA and cytogenetical markers // J. of Fish Biology. 2007. Vol. 71, № Suppl. C. P. 478 485. DOI: 10.1111/j.1095-8649.2007.01704.x.Fopp-Bayat D. Verification of meiotic gynogenesis in Siberian sturgeon (Acipenser baeri Brandt) using microsatellite DNA and cytogenetical markers // J. of Fish Biology. 2007. Vol. 71, № Suppl. C. P. 478 485. DOI: 10.1111/j.1095-8649.2007.01704.x.Georgescu S.E., Canareica O., Popa G. et al. Characterization of five microsatellites in the Siberian sturgeon Acipenser baerii from aquaculture // J. of Anim. Sci. and Biotechnol. 2013. Vol. 46. P. 95 98.Georgescu S.E., Canareica O., Popa G. et al. Characterization of five microsatellites in the Siberian sturgeon Acipenser baerii from aquaculture // J. of Anim. Sci. and Biotechnol. 2013. Vol. 46. P. 95 98.Georgescu S.E., Burcea A., Florescu I. et al. Microsatellite Variation in Russian Sturgeon (Acipenser gueldenstaedtii) from Aquaculture // Scientific Papers: Animal Science and Biotechnologies. 2014. Vol. 47, № 1. P. 73 78.Georgescu S.E., Burcea A., Florescu I. et al. Microsatellite Variation in Russian Sturgeon (Acipenser gueldenstaedtii) from Aquaculture // Scientific Papers: Animal Science and Biotechnologies. 2014. Vol. 47, № 1. P. 73 78.Moghim M., Javanmard A., Lolaei F. et al. Nuclear Multi-Microsatellite Marker Profiling Provides Clues to Molecular Genetic Diversity in Culture-Based Caspian Beluga Sturgeon (Huso huso) Brood Stocks: Ecological Mirror for Restoration // Veterinary Medicine and Science. 2025. Vol. 11, № 3. P. e70255. DOI: 10.1002/vms3.70255.Moghim M., Javanmard A., Lolaei F. et al. Nuclear Multi-Microsatellite Marker Profiling Provides Clues to Molecular Genetic Diversity in Culture-Based Caspian Beluga Sturgeon (Huso huso) Brood Stocks: Ecological Mirror for Restoration // Veterinary Medicine and Science. 2025. Vol. 11, № 3. P. e70255. DOI: 10.1002/vms3.70255.Гинаятов Н.С., Ковальчук А.М., Ульянова Т.В. и др. Сравнительная оценка генетического разнообразия осетровых рыб, выращиваемых в условиях аквакультуры // Наука и образование. 2024. № 3-1 (76). С. 105 114. DOI: 10.52578/2305-9397-2024-3-1-105-114.Гинаятов Н.С., Ковальчук А.М., Ульянова Т.В. и др. Сравнительная оценка генетического разнообразия осетровых рыб, выращиваемых в условиях аквакультуры // Наука и образование. 2024. № 3-1 (76). С. 105 114. DOI: 10.52578/2305-9397-2024-3-1-105-114.Слуквин А.М., Шейко Я.И., Кулешевич Я.П., Демянчик В.Т. Разработка методов молекулярного маркирования и генетической паспортизации белуги (Huso huso L.), выращиваемой в аквакультуре Республики Беларусь // Биологическое разнообразие: изучение, сохранение, восстановление, рациональное использование : материалы IV Междунар. науч.практ. конф. Симферополь, 2024. С. 308 314.Слуквин А.М., Шейко Я.И., Кулешевич Я.П., Демянчик В.Т. Разработка методов молекулярного маркирования и генетической паспортизации белуги (Huso huso L.), выращиваемой в аквакультуре Республики Беларусь // Биологическое разнообразие: изучение, сохранение, восстановление, рациональное использование : материалы IV Междунар. науч.практ. конф. Симферополь, 2024. С. 308 314.Бардуков Н.В., Никипелова А.К., Белоус А.А., Зиновьева Н.А. Разработка мультиплексной панели микросателлитов для генетической паспортизации сибирского осетра (Acipenser baerii) // С.-х. биология. 2023. Т. 58, № 6. С. 1057 1067. DOI: 10.15389/agrobiology.2023.6.1057rus.Бардуков Н.В., Никипелова А.К., Белоус А.А., Зиновьева Н.А. Разработка мультиплексной панели микросателлитов для генетической паспортизации сибирского осетра (Acipenser baerii) // С.-х. биология. 2023. Т. 58, № 6. С. 1057 1067. DOI: 10.15389/agrobiology.2023.6.1057rus.Никипелова А.К., Доцев А.В., Бардуков Н.В. и др. Характеристика аллелофонда сибирского осетра (Acipenser baerii B.), разводимого на территории России, с использованием оптимизированной мультиплексной панели микросателлитных локусов // Вестн. Перм. ун-та. Сер.: Биология. 2026. Т. 17, № 1. С. 42 54. DOI: 10.17072/1994-9952-2026-1-42-54.Никипелова А.К., Доцев А.В., Бардуков Н.В. и др. Характеристика аллелофонда сибирского осетра (Acipenser baerii B.), разводимого на территории России, с использованием оптимизированной мультиплексной панели микросателлитных локусов // Вестн. Перм. ун-та. Сер.: Биология. 2026. Т. 17, № 1. С. 42 54. DOI: 10.17072/1994-9952-2026-1-42-54.Щербакова В.Д., Барминцева А.Е., Сафронов А.С. Оценка генетического разнообразия стад русского осетра (Acipenser gueldenstaedtii Brandt, 1833) каспийской популяции семи осетровых рыбоводных заводов ФГБУ «Главрыбвод» // Соврем. проблемы и перспективы развития рыбохозяйствен. комплекса : материалы XI междунар. науч.-практ. конф. М.: ВНИРО, 2023. С. 243 245.Щербакова В.Д., Барминцева А.Е., Сафронов А.С. Оценка генетического разнообразия стад русского осетра (Acipenser gueldenstaedtii Brandt, 1833) каспийской популяции семи осетровых рыбоводных заводов ФГБУ «Главрыбвод» // Соврем. проблемы и перспективы развития рыбохозяйствен. комплекса : материалы XI междунар. науч.-практ. конф. М.: ВНИРО, 2023. С. 243 245.Dudu A., Suciu R., Paraschiv M. et al. Nuclear markers of Danube sturgeons hybridization // International J. of Molecular Sciences. 2011. Vol. 12. P. 6796 6809. DOI: 10.3390/ijms12106796.Dudu A., Suciu R., Paraschiv M. et al. Nuclear markers of Danube sturgeons hybridization // International J. of Molecular Sciences. 2011. Vol. 12. P. 6796 6809. DOI: 10.3390/ijms12106796.Zeng Q., Ye H., Ludwig A. et al. Microsatellite development for the endangered Yangtze sturgeon (Acipenser dabryanus Dumeril, 1869) using 454 sequencing // J. of Applied Ichthyology. 2013. Vol. 29. DOI: 10.1111/jai.12278.Zeng Q., Ye H., Ludwig A. et al. Microsatellite development for the endangered Yangtze sturgeon (Acipenser dabryanus Dumeril, 1869) using 454 sequencing // J. of Applied Ichthyology. 2013. Vol. 29. DOI: 10.1111/jai.12278.Yang S., Zhao Z., Xu Z. et al. Identification of Hybrid Sturgeon (Acipenser baerii × Acipenser schrenckii) from Their Parents Using Germplasm // Animals. 2025. Vol. 15, № 7. P. 907. DOI: 10.3390/ani15070907.Yang S., Zhao Z., Xu Z. et al. Identification of Hybrid Sturgeon (Acipenser baerii × Acipenser schrenckii) from Their Parents Using Germplasm // Animals. 2025. Vol. 15, № 7. P. 907. DOI: 10.3390/ani15070907.Барминцева А.Е., Мюге Н.С. Использование микросателлитных локусов для установления видовой принадлежности осетровых (Acipenseridae) и выявления особей гибридного происхождения // Генетика. 2013. Т. 49, № 9. С. 1093. DOI: 10.7868/S0016675813090038.Барминцева А.Е., Мюге Н.С. Использование микросателлитных локусов для установления видовой принадлежности осетровых (Acipenseridae) и выявления особей гибридного происхождения // Генетика. 2013. Т. 49, № 9. С. 1093. DOI: 10.7868/S0016675813090038.Birstein V.J., Doukakis P., DeSalle R. Polyphyly of mtDNA lineages in the Russian sturgeon, Acipenser gueldenstaedtii: forensic and evolutionary implications // Conservation Genetics. 2000. Vol. 1, № 1. P. 81 88.Birstein V.J., Doukakis P., DeSalle R. Polyphyly of mtDNA lineages in the Russian sturgeon, Acipenser gueldenstaedtii: forensic and evolutionary implications // Conservation Genetics. 2000. Vol. 1, № 1. P. 81 88.Jenneckens I., Meyer J.N., Debus L. et al. Evidence of mitochondrial DNA clones of Siberian sturgeon, Acipenser baerii, within Russian sturgeon, Acipenser gueldenstaedtii, caught in the River Volga // Ecology Letters. 2000. Vol. 3, № 6. P. 503 508.Jenneckens I., Meyer J.N., Debus L. et al. Evidence of mitochondrial DNA clones of Siberian sturgeon, Acipenser baerii, within Russian sturgeon, Acipenser gueldenstaedtii, caught in the River Volga // Ecology Letters. 2000. Vol. 3, № 6. P. 503 508.Мюге Н.С., Барминцева А.Е., Расторгуев С.М. и др. Полиморфизм контрольного региона митохондриальной ДНК восьми видов осетровых и разработка системы ДНКидентификации видов // Генетика. 2008. Т. 44, № 7. С. 913 919.Мюге Н.С., Барминцева А.Е., Расторгуев С.М. и др. Полиморфизм контрольного региона митохондриальной ДНК восьми видов осетровых и разработка системы ДНКидентификации видов // Генетика. 2008. Т. 44, № 7. С. 913 919.Birstein V.J., Ruban G., Ludwig A. et al. The enigmatic Caspian Sea Russian sturgeon: how many cryptic forms does it contain? // Systematics and Biodiversity. 2005. Vol. 3, № 2. P. 203 218.Birstein V.J., Ruban G., Ludwig A. et al. The enigmatic Caspian Sea Russian sturgeon: how many cryptic forms does it contain? // Systematics and Biodiversity. 2005. Vol. 3, № 2. P. 203 218.Hewitt G. The genetic legacy of the Quaternary ice ages // Nature. 2000. Vol. 405. P. 907 913. DOI: 10.1038/35016000.Hewitt G. The genetic legacy of the Quaternary ice ages // Nature. 2000. Vol. 405. P. 907 913. DOI: 10.1038/35016000.Мюге Н.С., Барминцева А.Е. Геномные исследования для сохранения осетровых: анализ наследования полиплоидных локусов и разработка панели маркеров для идентификации гибридов осетровых и продукции из них // Вестн. РФФИ. 2020. № 2 (106). С. 78 87. DOI: 10.22204/2410-4639-2020-106-02-78-87.Мюге Н.С., Барминцева А.Е. Геномные исследования для сохранения осетровых: анализ наследования полиплоидных локусов и разработка панели маркеров для идентификации гибридов осетровых и продукции из них // Вестн. РФФИ. 2020. № 2 (106). С. 78 87. DOI: 10.22204/2410-4639-2020-106-02-78-87.Wang J., Sun Z., Jiang L., Hu Y. Developing microsatellite duplex PCR reactions for sterlet (Acipenser ruthenus) and their application in parentage identification // Scientific Reports. 2022. Vol. 12. P. 12036. DOI: 10.1038/s41598-022-16194-3.Wang J., Sun Z., Jiang L., Hu Y. Developing microsatellite duplex PCR reactions for sterlet (Acipenser ruthenus) and their application in parentage identification // Scientific Reports. 2022. Vol. 12. P. 12036. DOI: 10.1038/s41598-022-16194-3.Никипелов В.И., Харзинова В.Р., Волкова В.В. и др. Разработка мультилокусной STR-панели и оценка достоверности происхождения аквакультурной стерляди (Acipenser ruthenus) // Изв. Нижневолжского агроуниверситетского комплекса: Наука и высшее проф. образование. 2024. № 3 (75). С. 273 283. DOI: 10.32786/2071-9485-2024-03-32.Никипелов В.И., Харзинова В.Р., Волкова В.В. и др. Разработка мультилокусной STR-панели и оценка достоверности происхождения аквакультурной стерляди (Acipenser ruthenus) // Изв. Нижневолжского агроуниверситетского комплекса: Наука и высшее проф. образование. 2024. № 3 (75). С. 273 283. DOI: 10.32786/2071-9485-2024-03-32.Congiu L., Pujolar J.M., Forlani A. et al. Managing Polyploidy in Ex Situ Conservation Genetics: The Case of the Critically Endangered Adriatic Sturgeon (Acipenser naccarii) // PLoS One. 2011. Vol. 6. e18249. DOI: 10.1371/journal.pone.0018249.Congiu L., Pujolar J.M., Forlani A. et al. Managing Polyploidy in Ex Situ Conservation Genetics: The Case of the Critically Endangered Adriatic Sturgeon (Acipenser naccarii) // PLoS One. 2011. Vol. 6. e18249. DOI: 10.1371/journal.pone.0018249.Boscari E., Pujolar J.M., Dupanloup I. et al. Captive breeding programs based on family groups in polyploid sturgeons // PLoS One. 2014. Vol. 9, № 10. e110951. DOI: 10.1371/journal.pone.0110951.Boscari E., Pujolar J.M., Dupanloup I. et al. Captive breeding programs based on family groups in polyploid sturgeons // PLoS One. 2014. Vol. 9, № 10. e110951. DOI: 10.1371/journal.pone.0110951.Hu Y., Liu X., Yang J. et al. Development and characterization of a duplex PCR assay in Chinese sturgeon (Acipenser sinensis) for genetic analysis // Scientific Reports. 2020. Vol. 10, № 1. P. 3451. DOI: 10.1038/s41598-020-60401-y.Hu Y., Liu X., Yang J. et al. Development and characterization of a duplex PCR assay in Chinese sturgeon (Acipenser sinensis) for genetic analysis // Scientific Reports. 2020. Vol. 10, № 1. P. 3451. DOI: 10.1038/s41598-020-60401-y.Бардуков Н.В., Никипелова А.К., Отраднов П.И. и др. Определение достоверности происхождения сибирского осетра на основе результатов микросателлитного анализа и коэффициентов генетического сходства // Животноводство и кормопроизводство. 2024. Т. 107, № 4. С. 106 119. DOI: 10.33284/2658-3135-107-4-106.Бардуков Н.В., Никипелова А.К., Отраднов П.И. и др. Определение достоверности происхождения сибирского осетра на основе результатов микросателлитного анализа и коэффициентов генетического сходства // Животноводство и кормопроизводство. 2024. Т. 107, № 4. С. 106 119. DOI: 10.33284/2658-3135-107-4-106.Pyatskowit J.D., Krueger C.C., Kincaid H.L., May B. Inheritance of microsatellite loci in the polyploid derivative lake sturgeon (Acipenser fulvescens) // Genome. 2001. Vol. 44. P. 185 191.Pyatskowit J.D., Krueger C.C., Kincaid H.L., May B. Inheritance of microsatellite loci in the polyploid derivative lake sturgeon (Acipenser fulvescens) // Genome. 2001. Vol. 44. P. 185 191.Havelka M., Bytyutskyy D., Symonova R. et al. The second highest chromosome count among vertebrates is observed in cultured sturgeon and is associated with genome plasticity // Genetics Selection Evolution. 2016. Vol. 48. P. 1 9. DOI: 10.1186/s12711-016-0194-0.Havelka M., Bytyutskyy D., Symonova R. et al. The second highest chromosome count among vertebrates is observed in cultured sturgeon and is associated with genome plasticity // Genetics Selection Evolution. 2016. Vol. 48. P. 1 9. DOI: 10.1186/s12711-016-0194-0.Biltueva L.S., Prokopov D.Y., Romanenko S.A. et al. Chromosome Distribution of Highly Conserved Tandemly Arranged Repetitive DNAs in the Siberian Sturgeon (Acipenser baerii) // Genes. 2020. Vol. 11, № 11. P. 1375. DOI: 10.3390/genes11111375.Biltueva L.S., Prokopov D.Y., Romanenko S.A. et al. Chromosome Distribution of Highly Conserved Tandemly Arranged Repetitive DNAs in the Siberian Sturgeon (Acipenser baerii) // Genes. 2020. Vol. 11, № 11. P. 1375. DOI: 10.3390/genes11111375.Fopp-Bayat D., Ocalewicz K., Kucinski M. et al. Disturbances in the ploidy level in the gynogenetic sterlet Acipenser ruthenus // J. of Applied Genetics. 2017. Vol. 58, № 3. P. 373 380. DOI: 10.1007/s13353-017-0392-7.Fopp-Bayat D., Ocalewicz K., Kucinski M. et al. Disturbances in the ploidy level in the gynogenetic sterlet Acipenser ruthenus // J. of Applied Genetics. 2017. Vol. 58, № 3. P. 373 380. DOI: 10.1007/s13353-017-0392-7.Kaldy J., Mozsar A., Fazekas G. et al. Hybridization of Russian Sturgeon (Acipenser gueldenstaedtii, Brandt and Ratzeberg, 1833) and American Paddlefish (Polyodon spathula, Walbaum 1792) and Evaluation of Their Progeny // Genes. 2020. Vol. 11, № 7. P. 753. DOI: 10.3390/genes11070753.Kaldy J., Mozsar A., Fazekas G. et al. Hybridization of Russian Sturgeon (Acipenser gueldenstaedtii, Brandt and Ratzeberg, 1833) and American Paddlefish (Polyodon spathula, Walbaum 1792) and Evaluation of Their Progeny // Genes. 2020. Vol. 11, № 7. P. 753. DOI: 10.3390/genes11070753.

The authors declare that there are no conflicts of interest present.