Preview

Успехи наук о животных

Расширенный поиск

Heyndrickxia Coagulans как пробиотик нового поколения

https://doi.org/10.25687/3034-493X.2026.6.1.002

Аннотация

Современное животноводство сталкивается с проблемой поиска эффективных и безопасных альтернатив кормовым антибиотикам в связи с глобальным распространением антибиотикорезистентности. Перспективным решением выступают пробиотики на основе Heyndrickxia coagulans (ранее Bacillus coagulans), сочетающие термостабильность и резистентность к кислой среде и желчным кислотам (свойства бацилл) с гомоферментативной продукцией L-молочной кислоты (свойства лактобацилл). В обзоре систематизированы данные о механизмах действия штаммов: модуляция кишечной микробиоты (увеличение численности Lactobacillus, Bifidobacterium и бутират продуцентов), укрепление барьерной функции кишечника через регуляцию белков плотных контактов и продукции муцина, иммуномодуляция (балансирование цитокинового профиля, взаимодействие с TLR-рецепторами), антагонизм в отношении Escherichia coli, Salmonella spp. и Clostridium perfringens, а также повышение переваримости кормов за счёт гидролитических ферментов. Эффективность подтверждена в птицеводстве, свиноводстве, скотоводстве и аквакультуре: улучшение продуктивности, конверсии корма и сохранности поголовья. Геномный анализ подтверждает безопасность (статус GRAS/QPS, отсутствие генов патогенности и трансмиссивной резистентности). Рассмотрены новые области применения (стоматология, коррекция метаболических нарушений) и перспективы использования H. coagulans в синбиотических комплексах в рамках стратегии снижения антибиотиков.

Об авторах

А. Н. Овчарова
ВНИИФБиП — филиал ФГБНУ ФИЦ ВИЖ им. Л.К. Эрнста
Россия

Калужская обл.



К. С. Остренко
ВНИИФБиП — филиал ФГБНУ ФИЦ ВИЖ им. Л.К. Эрнста
Россия

Калужская обл.



Список литературы

1. Al-Khalaifa H. et al. Effect of dietary probiotics and prebiotics on the performance of broiler chickens // Poult. Sci. 2019. Vol. 98. № 10. P. 4465 – 4479. DOI: 10.3382/ps/pez282.

2. Buiatte V., Schultheis M., Lorenzoni A.G. Deconstruction of a multi-strain Bacillus-based probiotic used for poultry: an in vitro assessment of its individual components against C. perfringens // BMC Res. Notes. 2023. Vol. 16. № 1. P. 117. DOI: 10.1186/s13104-023-06384-1.

3. Зайбих Л. Пробиотики: сейчас и тогда. Инновации в области здоровья кишечника // Комбикорма. 2021. № 9. С. 65 – 67.

4. FAO/WHO. Guidelines for the evaluation of probiotics in food. London, Ontario, Canada, 2002. 11 с.

5. Payne J. et al. The potential of Bacillus species as probiotics in the food industry: A review // Foods. 2024. Vol. 13. № 15. P. 2444. DOI: 10.3390/foods13152444.

6. Wang L. et al. Application of Weizmannia coagulans in the medical and livestock industry // Ann. Microbiol. 2022. Vol. 72. P. 30. DOI: 10.1186/s13213-022-01687-3.

7. Dooley D. et al. Expanded genome and proteome reallocation in a novel, robust Bacillus coagulans strain capable of utilizing pentose and hexose sugars // mSystems. 2024. Vol. 9. № 11. P. e0095224. DOI: 10.1128/msystems.00952-24.

8. Liang J. et al. Progress of research and application of Heyndrickxia coagulans (Bacillus coagulans) as probiotic bacteria // Front. Cell Infect Microbiol. 2024. May 28; 14: 1415790. doi: 10.3389/fcimb.2024.1415790.

9. De Clerck E. et al. Polyphasic characterization of Bacillus coagulans strains, illustrating heterogeneity within this species, and emended description of the species // Syst. Appl. Microbiol. 2004. Vol. 27. № 1. P. 50 – 60. DOI: 10.1078/0723-2020-00250.

10. Sarles W.B., Hammer B.W. Observations on Bacillus coagulans // J. Bacteriol. 1932. Vol. 23. № 4. P. 301 – 314. DOI: 10.1128/jb.23.4.301-314.1932.

11. Zhu M. et al. Complete genome sequence of Heyndrickxia (Bacillus) coagulans BC99 isolated from a fecal sample of a healthy infant // Microbiol. Resour. Announc. 2024. Vol. 13. № 1. P. e0044923. DOI: 10.1128/mra.00449-23.

12. Wang Y. et al. Complete genome sequencing revealed the potential application of a novel Weizmannia coagulans PL-W with promising bacteriocins in food preservative // Foods. 2023. Vol. 12. № 1. P. 216. DOI: 10.3390/foods12010216.

13. Ертилецкая Н.Л. и др. Исследование продуктивности и свойств штамма Weizmannia coagulans, способного синтезировать L-молочную кислоту // Изв. вузов. Прикладная химия и биотехнология. 2024. Т. 14. № 4. С. 512 – 520. DOI: 10.21285/2227-2925-2024-14-4-512-520.

14. Pamueangmun P. et al. Probiotic potential of Weizmannia coagulans MA42, an endospore-forming probiotic bacterium capable of dietary fiber digestion // Foods. 2024. Vol. 13. № 4. P. 710. DOI: 10.3390/foods13040710.

15. Сульдина Е.В. и др. Разработка молекулярно-генетической системы детекции уровня экспрессии генов Heyndrickxia coagulans // Вестн. Ульянов. гос. с.-х. акад. 2024. № 3 (63). С. 109 – 116. DOI: 10.18286/1816-4501-2024-3-109-116.

16. Gupta R.S. et al. Robust demarcation of 17 distinct Bacillus species clades, proposed as novel Bacillaceae genera, by phylogenomics and comparative genomic analyses: description of Robertmurraya kyonggiensis sp. nov. and proposal for emended genus Bacillus // Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2020. Vol. 70. № 11. P. 5753 – 5798. DOI: 10.1099/ijsem.0.004475.

17. Narsing Rao M.P. et al. Genome-based reclassification of Bacillus acidicola, Bacillus pervagus and the genera Heyndrickxia, Margalitia and Weizmannia // Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2023. Vol. 73. № 7. DOI: 10.1099/ijsem.0.005961.

18. Shaikh S.S. et al. In-silico analysis of probiotic attributes and safety assessment of probiotic strain Bacillus coagulans BCP92 for human application // Lett Appl Microbiol. 2024. Jan. 2; 77 (1): ovad145. doi: 10.1093/lambio/ovad145.

19. Мартынова К.В. Бактериологическая идентификация бактерий Bacillus coagulans, выделенных из томатов и томатосодержащих продуктов питания // Актуал. вопр. ветеринар. биологии. 2019. № 2 (42). С. 23 – 28. DOI: 10.24411/2074-5036-2019-10019.

20. Wang Y. et al. Elucidating the Role and Regulation of a Lactate Permease as Lactate Transporter in Bacillus coagulans DSM1 // Appl Environ Microbiol. 2019. Jul. 1; 85 (14): e00672 – 19. doi: 10.1128/AEM.00672-19.

21. Kim J.A., Kim D.H., Kim Y. Complete genome sequence of Bacillus coagulans CACC834 isolated from canine // J. Anim. Sci. Technol. 2021. Vol. 63. № 6. P. 1464 – 1467. DOI: 10.5187/jast.2021.e108.

22. Su F., Xu P. Genomic analysis of thermophilic Bacillus coagulans strains: efficient producers for platform chemicals // Sci. Rep. 2014. Vol. 4. P. 3926. DOI: 10.1038/srep03926.

23. Wu Y. et al. Comprehensive genomic analysis and evaluation of in vivo and in vitro safety of Heyndrickxia coagulans BC99 // Sci. Rep. 2024. Vol. 14. № 1. P. 26602. DOI: 10.1038/s41598-024-78202-y.

24. Hyronimus B., Le Marrec C., Urdaci M.C. Coagulin, a bacteriocin-like inhibitory substance produced by Bacillus coagulans I4 // J. Appl. Microbiol. 1998. Jul.; 85(1): 42 – 50. doi: 10.1046/j.1365-2672.1998.00466.x.

25. Endres J.R. et al. Safety assessment of a proprietary preparation of a novel Probiotic, Bacillus coagulans, as a food ingredient // Food Chem. Toxicol. 2009. Vol. 47. № 6. P. 1231 – 1238. DOI: 10.1016/j.fct.2009.02.018.

26. Endres J.R. et al. One-year chronic oral toxicity with combined reproduction toxicity study of a novel probiotic, Bacillus coagulans, as a food ingredient // Food Chem. Toxicol. 2011. Vol. 49. № 5. P. 1174 – 1182. DOI: 10.1016/j.fct.2011.02.012.

27. Orrù L. et al. Draft genome sequence of Bacillus coagulans GBI-30, 6086, a widely used spore-forming probiotic strain // Genome Announc. 2014. Vol. 2. № 6. P. e01080 – 14. DOI: 10.1128/genomeA.01080-14.

28. Salvetti E. et al. Integrate genome-based assessment of safety for probiotic strains: Bacillus coagulans GBI-30, 6086 as a case study // Appl. Microbiol. Biotechnol. 2016. Vol. 100. № 10. P. 4595 – 4605. DOI: 10.1007/s00253-016-7416-9.

29. Салмина Е.С. и др. Определение хронической токсичности пробиотика Bacillus coagulans // Учен. записки Казан. гос. акад. ветеринар. медицины им. Н.Э. Баумана. 2022. Т. 252. № 4. С. 215 – 220.

30. Проворова Н.А. и др. Гистологическое исследование печени и 12-перстной кишки лабораторных мышей при использовании пробиотика Bacillus coagulans // Учен. записки Казан. гос. акад. ветеринар. медицины им. Н.Э. Баумана. 2023. Т. 254. № 2. С. 198 – 203.

31. Квашнина Л.В., Родионов В.П. Коррекция дисбиоза кишечника у детей младшего школьного возраста в период реабилитации после инфекционных гастроэнтеритов с помощью препарата Лактовит Форте // Здоровье ребенка. 2012. № 7 (42). С. 42 – 46. DOI: 10.22141/2224-0551.0.7.42.2012.193634.

32. Квашнина Л.В., Родионов В.П., Матвиенко И.Н. Возможности коррекции дефицита железа и нарушений микробиоценоза кишечника у детей // Здоровье ребенка. 2016. № 6 (74). С. 68 – 73.

33. Romanova N.A. et al. A thermophilic L-lactic acid producer of high optical purity: Isolation and identification // Microbiology. 2024. Vol. 93. № 2. P. 145 – 153. DOI: 10.1134/S0026261723603329.

34. Cox R. et al. Fermentative valorisation of xylose-rich hemicellulosic hydrolysates from agricultural waste residues for lactic acid production under non-sterile conditions // Waste Manag. 2023. Vol. 166. P. 336 – 345. DOI: 10.1016/j.wasman.2023.05.015.

35. Olszewska-Widdrat A. et al. Bioprocess optimization for lactic and succinic acid production from a pulp and paper industry side stream // Front. Bioeng. Biotechnol. 2023. Vol. 11. P. 1176043. DOI: 10.3389/fbioe.2023.1176043.

36. Zhang Z. et al. Effective gossypol removal from cottonseed meal through optimized solid-state fermentation by Bacillus coagulans // Microb. Cell Fact. 2022. Vol. 21. № 1. P. 252. DOI: 10.1186/s12934-022- 01976-1.

37. Mazhar S., et al. In vitro safety and functional characterization of the novel Bacillus coagulans strain CGI314 // Front. Microbiol. 2024. 14: 1302480. doi: 10.3389/fmicb.2023.1302480.

38. Sreenadh M., Kumar K.R., Nath S. In Vitro Evaluation of Weizmannia coagulans Strain LMG S- 31876 Isolated from Fermented Rice for Potential Probiotic Properties, Safety Assessment and Technological Properties // Life (Basel). 2022. Sep. 6; 12 (9): 1388. doi: 10.3390/life12091388.

39. Kalogridou-Vassiliadou D. Biochemical activities of Bacillus species isolated from flat sour evaporated milk // J. Dairy Sci. 1992. Oct.; 75 (10): 2681 – 6. doi: 10.3168/jds.S0022-0302(92)78030-8.

40. Bromfield J.I. et al. The evaluation of next-generation probiotics on broiler growth performance, gut morphology, gut microbiome, nutrient digestibility, in addition to enzyme production of Bacillus spp. in vitro // Anim. Nutr. 2024. Vol. 18. P. 133 – 144. DOI: 10.1016/j.aninu.2024.03.013.

41. Suwanangul S. et al. Innovative Insights for Establishing a Synbiotic Relationship with Bacillus coagulans: Viability, Bioactivity, and In Vitro-Simulated Gastrointestinal Digestion // Foods. 2023. Oct. 8; 12 (19): 3692. doi: 10.3390/foods12193692. PMID: 37835345; PMCID: PMC10572198.

42. Петров А.Н., Матвеенко А.С., Стрижко М.Н. Исследование штаммов микроорганизмов, обладающих β-галактозидазной активностью, и их анализ // Техника и технология пищевых производств. 2013. № 1 (28). С. 95 – 101.

43. Zhang B. et al. Effects of Bacillus coagulans on growth performance, antioxidant capacity, immunity function, and gut health in broilers // Poult. Sci. 2021. Vol. 100. № 6. P. 101168. DOI: 10.1016/j.psj.2021.101168.

44. Cavazzoni V., Adami A., Castrovilli C. Performance of broiler chickens supplemented with Bacillus coagulans as probiotic // Br. Poult. Sci. 1998. Vol. 39. № 4. P. 526 – 529. DOI: 10.1080/00071669888719.

45. Wu Y. et al. Effects of Bacillus coagulans supplementation on the growth performance and gut health of broiler chickens with Clostridium perfringens-induced necrotic enteritis // J. Anim. Sci. Biotechnol. 2018. Vol. 9. P. 9. DOI: 10.1186/s40104-017-0220-2.

46. Zhen W. et al. Effect of dietary Bacillus coagulans supplementation on growth performance and immune responses of broiler chickens challenged by Salmonella enteritidis // Poult. Sci. 2018. Vol. 97. № 8. P. 2654 – 2666. DOI: 10.3382/ps/pey119.

47. Wang Y., Gu Q. Effect of probiotic on growth performance and digestive enzyme activity of Arbor Acres broilers // Res Vet Sci. 2010. Oct.; 89 (2): 163 – 7. doi: 10.1016/j.rvsc.2010.03.009. Epub 2010 Mar 29. PMID: 20350733.

48. Забашта Н.Н. и др. Использование пробиотической кормовой добавки «Лактовит-ЖК» на основе функциональных молочнокислых микроорганизмов в рационе цыплят-бройлеров // Сб. науч. тр. Сев.-Кав. НИИ животноводства. 2016. Т. 5. С. 112 – 118.

49. Reda F.M. et al. Harnessing functional feed additives for sustainable production: the role of Bacillus coagulans and Paenibacillus polymyxa mixture in improving production and health of meat-type quails // Front Vet Sci. 2025. Sep. 24; 12: 1639681. doi: 10.3389/fvets.2025.1639681.

50. Yu X. et al. Effects of dietary Bacillus coagulans on growth performance, immune function and antioxidant status of lipopolysaccharide-challenged broilers // Ital. J. Anim. Sci. 2022. Vol. 21. № 1. P. 901 – 910. doi: 10.3389/fvets.2022.846649.

51. Мерзлякова А.В., Мерзляков С.В., Жолобова И.С. Эффективность использования пробиотиков на основе Bacillus subtilis и Bacillus coagulans при выращивании перепелов // Птицеводство. 2019. № 5. С. 32 – 36.

52. Hamzhehee Z. et al. Effects of dietary of Bacillus coagulans, whey powder, and their interaction on the performance of Lohmann LSL-lite laying hens in the late production phase // PLoS One. 2025. Vol. 20. № 5. P. e0322557. DOI: 10.1371/journal.pone.0322557.

53. Xu L. et al. Research Note: Effects of Bacillus coagulans X26 on the production performance, intestinal structure, short-chain fatty acids and flora composition of laying hens during the peak laying period // Poult. Sci. 2022. Jun.; 101 (6): 101835. doi: 10.1016/j.psj.2022.101835.

54. Xing S.C. et al. The combination of lead and Bacillus coagulans R11 increased the concentration of alpha-solanine in the cecum of laying hens and the pathogens abundance decreased // Front. Microbiol. 2020. Vol. 11. P. 585197. DOI: 10.3389/fmicb.2020.585197.

55. Wu T. et al. Beneficial impact and molecular mechanism of Bacillus coagulans on piglets' intestine // Int. J. Mol. Sci. 2018. Vol. 19. № 7. P. 2084. DOI: 10.3390/ijms19072084.

56. Wu T. et al. Protective effects of α-terpineol and Bacillus coagulans on intestinal function in weaned piglets infected with a recombinant Escherichia coli expressing heat-stable enterotoxin STa // Front. Vet. Sci. 2023. Feb. 10; 10: 1118957. doi: 10.3389/fvets.2023.1118957.

57. Zheng W. et al. The synbiotic mixture of lactulose and Bacillus coagulans protects intestinal barrier dysfunction and apoptosis in weaned piglets challenged with lipopolysaccharide // J. Anim. Sci. Biotechnol. 2023. Vol. 14. № 1. P. 80. DOI: 10.1186/s40104-023-00882-9.

58. Aida M. et al. Heyndrickxia coagulans SANK70258 supplementation improves growth performance, gut health, and liver function in growing pigs // Front. Vet. Sci. 2025. May. 27; 12: 1537913. doi: 10.3389/fvets.2025.1537913.

59. Ripamonti B. et al. Administration of Bacillus coagulans in calves: recovery from faecal samples and evaluation of functional aspects of spores // Vet. Res. Commun. 2009. Vol. 33. № 8. P. 991 – 1001. DOI: 10.1007/s11259-009-9318-0.

60. Zhang C. et al. Effects of adding Bacillus coagulans to the diet on diarrhea, gut microbiota, and metabolites in yak // BMC Vet. Res. 2025. Vol. 22. № 1. P. 41. DOI: 10.1186/s12917-025-05205-w.

61. Zhang C. et al. Effects of dietary supplementation with Bacillus coagulans on growth and immune performance, rumen microorganisms, and metabolites of yaks // BMC Microbiol. 2025. Dec. 8; 25 (1): 789. doi: 10.1186/s12866-025-04498-z.

62. Fath El-Bab A.F. et al. Dietary supplementation of Nile tilapia (Oreochromis niloticus) with β-glucan and/or Bacillus coagulans: Synergistic impacts on performance, immune responses, redox status and expression of some related genes // Front. Vet. Sci. 2022. Vol. 9. P. 1011715. DOI: 10.3389/fvets.2022.1011715.

63. Amoah K. et al. Dietary supplementation of probiotic Bacillus coagulans ATCC 7050 and its effects on growth performance, immune response, intestinal microbiota, and disease resistance in white shrimp (Litopenaeus vannamei) // Fish Shellfish Immunol. 2019. Vol. 89. P. 641 – 649.

64. Zheng X. et al. Low fish meal diet supplemented with probiotics ameliorates intestinal barrier and immunological function of Macrobrachium rosenbergii via the targeted modulation of gut microbes and derived secondary metabolites // Front. Immunol. 2022. Vol. 13. P. 1074399. DOI: 10.3389/fimmu.2022.1074399.

65. Ильяшенко А.Н. Бациллярные пробиотики в кормлении и содержании гидробионтов // Животноводство и кормопроизводство. 2022. № 4. URL: https://cyberleninka.ru/article/n/batsillyarnye-probiotiki-v-kormlenii-i-soderzhanii-gidrobiontov (дата обращения: 02.04.2026).

66. Zhang S. et al. Lipoteichoic acid from Heyndrickxia coagulans HOM5301 modulates the immune response of RAW 264.7 macrophages // Nutrients. 2024. Vol. 16. № 17. P. 3014. DOI: 10.3390/nu16173014.

67. Hou J. et al. Effects of dietary Bacillus coagulans and tributyrin on growth performance, serum antioxidants, intestinal morphology, and cecal microbiota of growing yellow-feathered broilers // Animals. 2023. Vol. 13. № 22. P. 3534. DOI: 10.3390/ani13223534.

68. Wang Y. et al. Bacillus coagulans TL3 inhibits LPS-induced caecum damage in rat by regulating the TLR4/MyD88/NF-κB and Nrf2 signal pathways and modulating intestinal microflora // Oxid. Med. Cell. Longev. 2022. Vol. 2022. P. 5463290. DOI: 10.1155/2022/5463290.

69. Liu Z. et al. Bacillus coagulans regulates gut microbiota and ameliorates the alcoholic-associated liver disease in mice // Front. Microbiol. 2024. Vol. 15. P. 1337185. DOI: 10.3389/fmicb.2024.1337185.

70. Liu Z. et al. Bacillus coagulans-pectin synbiotic modulates gut microbiota composition and attenuates ethanol-induced alcoholic liver disease in mice // Microorganisms. 2025. Vol. 13. № 9. P. 1986. DOI: 10.3390/microorganisms13091986.

71. Lee Y. et al. Combination of soya pulp and Bacillus coagulans lilac-01 improves intestinal bile acid metabolism without impairing the effects of prebiotics in rats fed a cholic acid-supplemented diet // Br. J. Nutr. 2016. Vol. 116. № 4. P. 603 – 610. DOI: 10.1017/S0007114516002270.

72. Xing S.C. et al. Bacillus coagulans R11 maintained the intestinal immune response and structural integrity of broiler chickens to against lead toxicity // Biol. Trace Elem. Res. 2018. Vol. 185. № 1. P. 214 – 222. DOI: 10.1007/s12011-018-1244-6.

73. Ашихмина М.С. и др. Разработка технологии лиофилизации и оптимизация криопротекторов для улучшения совместного культивирования бактерий Bacillus coagulans и Streptococcus thermophilus // Ползунов. вестн. 2024. № 2. С. 37 – 45. DOI: 10.25712/ASTU.2072-8921.2024.02.005.

74. Farajinejad Z. et al. In situ produced exopolysaccharides by Bacillus coagulans IBRC-M 10807 and its effects on properties of whole wheat sourdough // Food Sci. Nutr. 2023. Vol. 11. № 11. P. 7000 – 7012. DOI: 10.1002/fsn3.3624.

75. Pan L. et al. Effects of different strains fermentation on nutritional functional components and flavor compounds of sweet potato slurry // Front. Nutr. 2023. Vol. 10. P. 1241580. DOI: 10.3389/fnut.2023.1241580.

76. Самсонова Д.А. и др. Гороховая дисперсия как основа для производства ферментированных продуктов // Новые технологии. 2025. № 1. С. 112 – 120.

77. Soodbar M. et al. Physicochemical, antioxidant characteristics and sensory evaluation of functional pro-biogenic ice cream // Food Sci. Nutr. 2024. Vol. 13. № 1. P. e4619. DOI: 10.1002/fsn3.4619.

78. Liu Z. et al. Bacillus coagulans in combination with chitooligosaccharides regulates gut microbiota and ameliorates the DSS-induced colitis in mice // Microbiol. Spectr. 2022. Vol. 10. № 4. P. e0064122. DOI: 10.1128/spectrum.00641-22.

79. Abhari K. et al. The effects of orally administered Bacillus coagulans and inulin on prevention and progression of rheumatoid arthritis in rats // Food Nutr. Res. 2016. Vol. 60. P. 30876. DOI: 10.3402/fnr.v60.30876.

80. Niu J. et al. Protease and Bacillus coagulans Supplementation in a Low-Protein Diet Improves Broiler Growth, Promotes Amino Acid Transport Gene Activity, Strengthens Intestinal Barriers, and Alters the Cecal Microbial Composition // Animals (Basel). 2025. Jan. 10.;15 (2): 170. doi: 10.3390/ani15020170.

81. Wu T. et al. Protective effects of α-terpineol and Bacillus coagulans on intestinal function in weaned piglets infected with a recombinant Escherichia coli expressing heat-stable enterotoxin STa // Front. Vet. Sci. 2023. Vol. 10. P. 1118957. DOI: 10.3389/fvets.2023.1118957.

82. Aulitto M. et al. Thermophilic biocatalysts for one-step conversion of citrus waste into lactic acid // Appl. Microbiol. Biotechnol. 2024. Vol. 108. № 1. P. 155. DOI: 10.1007/s00253-023-12904-7.

83. Marzo-Gago C. et al. Valorising pasta industry wastes by the scale up and integration of solid-state and liquid-submerged fermentations // Bioresour. Technol. 2024. Vol. 391. P. 129909. DOI: 10.1016/j.biortech.2023.129909.

84. Jung S.M. et al. Effect of Bacillus coagulans SNZ 1969 on the Improvement of Bowel Movement in Loperamide-Treated SD Rats // Nutrients. 2022. Vol. 14. № 18. P. 3710. DOI: 10.3390/nu14183710.

85. Almada-Érix C.N. et al. Orange Juice and Yogurt Carrying Probiotic Bacillus coagulans GBI-30 6086: Impact of Intake on Wistar Male Rats Health Parameters and Gut Bacterial Diversity // Front Microbiol. 2021. Apr. 1; 12: 623951. doi: 10.3389/fmicb.2021.623951.

86. Kang Y. et al. Combined microbiome and metabolomics analysis of yupingfeng san fermented by Bacillus coagulans: insights into probiotic and herbal interactions // PeerJ. 2025. Vol. 13. P. e19206. DOI: 10.7717/peerj.19206.

87. Masuda Y. et al. Construction of leaderless-bacteriocin-producing bacteriophage targeting E. coli and neighboring Gram-positive pathogens // Microbiol. Spectr. 2021. Vol. 9. № 1. P. e00141 – 21. DOI: 10.1128/Spectrum.00141-21.

88. Khajeh Bami M., Afsharmanesh M., Ebrahimnejad H. Effect of Dietary Bacillus coagulans and Different Forms of Zinc on Performance, Intestinal Microbiota, Carcass and Meat Quality of Broiler Chickens // Probiotics Antimicrob Proteins. 2020 Jun.; 12 (2): 461 – 472. doi: 10.1007/s12602-019-09558-1.

89. Liu J. et al. Co-culture of Bacillus coagulans and Candida utilis efficiently treats Lactobacillus fermentation wastewater // AMB Express. 2019. Vol. 9. №. 1. P. 1 – 6. DOI: 10.1186/s13568-019-0792-7.


Рецензия

Для цитирования:


Овчарова А.Н., Остренко К.С. Heyndrickxia Coagulans как пробиотик нового поколения. Успехи наук о животных. 2026;(1):16-35. https://doi.org/10.25687/3034-493X.2026.6.1.002

For citation:


Ovcharova A.N., Ostrenko K.S. Heyndrickxia Coagulans as a next-generation probiotic: biological properties, mechanisms of action, and prospects for application in animal husbandry. Ernst Journal of Animal Science. 2026;(1):16-35. (In Russ.) https://doi.org/10.25687/3034-493X.2026.6.1.002

Просмотров: 139

JATS XML


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 3034-493Х (Online)