Preview

Успехи наук о животных

Расширенный поиск

Факторы эффективности использования доноров
 для получения ооцитов у крупного рогатого скота

https://doi.org/10.25687/3034-493X.2026.6.1.003

Аннотация

Обзор посвящен анализу факторов, оказывающих влияние на эффективность использования доноров для получения ооцитов посредством аспирации фолликулов яичников под ультразвуковым контролем (OPU) у крупного рогатого скота. Во введении подчёркивается постепенная замена производства эмбрионов in vivo продукцией эмбрионов, полученных in vitro
 из ооцитов, извлеченных посредством OPU. Это делает важным решение задачи повышения количества и качества ооцитов, получаемых от самок-доноров. Материалом для исследований служили научно информационные источники, представленные в российских и международных базах (E-Library, Wiley, Elsevier, ResearchGate, PubMed), статистические и аналитические данные комитета по сбору данных Международного общества эмбриональных технологий (IETS) (https://www.iets.org/ Committees/Data-Retrieval-Committee). Для написания обзора был отобран 151 первоисточник. Проведен краткий анализ современного состояния исследований особенностей полового цикла самок крупного рогатого скота. Описаны методы, которые помогают улучшить результаты OPU у коров. Среди них: подбор оптимальных технических параметров процедуры, проведение OPU на определенной стадии развития фолликулов, стимуляция роста и созревания фолликулов с помощью гонадотропинов, а также использование биомаркеров для отбора лучших коров-доноров. Показан вклад собственных исследований авторов в решение вышеназванной научной проблемы.

Об авторах

Р. Ю. Чинаров
ФГБНУ ФИЦ ВИЖ им. Л.К. Эрнста
Россия

Московская обл.



С. В. Позябин
ФГБОУ ВО МГАВМиБ — МВА им. К.И. Скрябина
Россия

Москва



В. А. Багиров
ФГБНУ ФИЦ ВИЖ им. Л.К. Эрнста
Россия

Московская обл.



Список литературы

1. Pieterse M.C. et al. Transvaginal ultrasound guided follicular aspiration of bovine oocytes // Theriogenology. 1991. Vol. 35. Р. 19–24.

2. Boni R. Ovum pick-up in cattle: A 25 years retrospective analysis // Anim. Reproduction. 2012. Vol. 9 (3). Р. 362–369.

3. Smith C. Applications of embryo transfer in animal breeding // Theriogenology. 1988. Vol. 29. Р. 203–212.

4. Ferré L. et al. Recent advances in bovine in vitro embryo production: Reproductive biotechnology history and methods // Animal. 2019. 1 – 14. doi: 10.1017/S1751731119002775.

5. Чинаров Р.Ю., Луканина В.А. Производство эмбрионов крупного рогатого скота с использованием прижизненно получаемых ооцитов: мировые тренды и перспективы (обзор) // Достижения науки и техники АПК. 2023. Т. 37. № 9. С. 31 – 38. doi: 10.53859/02352451_2023_37_9_31.

6. Viana J.H.M. A new milestone has been reached: transfers of IVP embryos were over one million worldwide // Embryo Technology Newsletter. 2022. Vol. 40 (4). Р. 22–40.

7. Столповский Ю.А., Захаров-Гезехус И.А. Проблема сохранения генофондов доместицированных животных // Вавиловский журн. генетики и селекции. 2017. Т. 21. № 4. С. 477 – 486. Doi: 10.18699/VJ17.266.

8. Станишевская О.И., Черепанов С.В., Силюкова Ю.Л. Организационные аспекты сохранения генетических ресурсов сельскохозяйственных животных: мировой опыт // Генетика и разведение животных. 2017. № 3. С. 3 – 11.

9. Sirard M.-A. et al. Contribution of the oocyte to embryo quality // Theriogenology. 2006. Vol. 65. Р. 126 – 136.

10. Velazquez M.A. Nutritional Strategies to Promote Bovine Oocyte Quality for In Vitro Embryo Production: Do They Really Work? // Vet. Sci. 2023. Oct. 4. Vol. 10 (10). Р. 604. doi: 10.3390/vetsci10100604.

11. Barceló-Fimbres M. et al. Improving in vitro maturation and pregnancy outcome in cattle using a novel oocyte shipping and maturation system not requiring a CO2 gas phase // Theriogenology. 2015. Vol. 84. Р. 109 – 117. doi: 10.1016/j.theriogenology.2015.02.020.

12. Gamarra G. et al. Dietary propylene glycol and in vitro embryo production after ovum pick-up in heifers with different anti-Müllerian hormone profiles // Reprod. Fertil. Dev. 2015. Vol. 27. Р. 1249 – 1261. doi: 10.1071/RD14091.

13. Soares A.C.S. et al. Synchronization of germinal vesicle maturity improves efficacy of in vitro embryo production in Holstein cows // Theriogenology. 2020. Vol. 154. Р. 53 – 58. doi: 10.1016/j.theriogenology.2020.05.030.

14. Hayden C.B. et al. Synchronization of follicle wave emergence before ovarian superstimulation with FSH and ovum pick-up improves in vitro embryo production in pregnant heifers // Theriogenology. 2022. Vol. 188. Р. 71 – 78. doi: 10.1016/j.theriogenology.2022.05.017.

15. Sanei M. et al. The relationship between bovine blastocyst formation in vitro and follicular fluid amino acids // Theriogenology. 2023. Vol. 206. Р. 197 – 204. doi: 10.1016/j.theriogenology.2023.05.016.

16. Simmons R. et al. Enhanced progesterone support during stimulated cycles of transvaginal follicular aspiration improves bovine in vitro embryo production // Theriogenology. 2023. Vol. 199. Р. 77 – 85. doi: 10.1016/j.theriogenology.2023.01.003.

17. Vieira L.M. et al. Superstimulation prior to the ovum pick-up to improve in vitro embryo production in lactating and non-lactating Holstein cows // Theriogenology. 2014. Vol. 82 (2). Р. 318 – 324. (doi: 10.1016/j.theriogenology.2014.04.013).

18. Vieira L.M. et al. Efficacy of a single intramuscular injection of porcine FSH in hyaluronan prior to ovum pick-up in Holstein cattle // Theriogenology. 2016. Vol. 85. Р. 877 – 886. doi: 10.1016/j.theriogenology.2015.10.036.

19. Tutt D.A.R. et al. Analysis of bovine blastocysts indicates ovarian stimulation does not induce chromosome errors, nor discordance between inner-cell mass and trophectoderm lineages // Theriogenology. 2021. Vol. 161. Р. 108 – 119. doi: 10.1016/j.theriogenology.2020.11.021.

20. Grimard B. et al. Postpartum variations of plasma IGF and IGFBPs, oocyte production and quality in dairy cows: Relationships with parity and subsequent fertility // Reprod. Domest. Anim. 2013. Vol. 48. Р. 183 – 194. doi: 10.1111/j.1439-0531.2012.02127.x.

21. Merton J.S. et al. Cysteamine supplementation during in vitro maturation of slaughterhouse- and opu- derived bovine oocytes improves embryonic development without affecting cryotolerance, pregnancy rate, and calf characteristics // Theriogenology. 2013. Vol. 80. Р. 365 – 371. doi: 10.1016/j.theriogenology.2013.04.025.

22. Galli C. et al. Ovum pick up, intracytoplasmic sperm injection and somatic cell nuclear transfer in cattle, buffalo and horses: From the research laboratory to clinical practice // Theriogenology. 2014. Vol. 81. Р. 138 – 151. doi: 10.1016/j.theriogenology.2013.09.008.

23. Moallem U. et al. Dietary α-linolenic acid from flaxseed oil improved folliculogenesis and IVF performance in dairy cows, similar to eicosapentaenoic and docosahexaenoic acids from fish oil // Reproduction. 2013. Vol. 146. Р. 603 – 614. doi: 10.1530/REP-13-0244.

24. Guerreiro B.M. et al. Plasma anti-mullerian hormone: An endocrine marker for in vitro embryo production from Bos taurus and Bos indicus donors // Domest. Anim. Endocrinol. 2014. Vol. 49. Р. 96 – 104. doi: 10.1016/j.domaniend.2014.07.002.

25. Gimenes L.U. et al. The interval between the emergence of pharmacologically synchronized ovarian follicular waves and ovum pickup does not significantly affect in vitro embryo production in Bos indicus, Bos taurus, and Bubalus bubalis // Theriogenology. 2015. Vol. 83. Р. 385 – 393. doi: 10.1016/j.theriogenology.2014.09.030.

26. Vernunft A. et al. Anti-Muellerian hormone levels in plasma of Holstein-Friesian heifers as a predictive parameter for ovum pick-up and embryo production outcomes // J. Reprod. Dev. 2015. Vol. 61. Р. 74 – 79. doi: 10.1262/jrd.2014-091.

27. Gutiérrez-Añez J.C. et al. Melatonin enhances in vitro developmental competence of cumulus-oocyte complexes collected by ovum pick-up in prepubertal and adult dairy cattle // Theriogenology. 2021. Vol. 161. Р. 285 – 293. doi: 10.1016/j.theriogenology.2020.12.011.

28. Serbetci I. et al. Impact of negative energy balance and postpartum diseases during the transition period on oocyte quality and embryonic development in dairy cows // Front. Vet. Sci. 2024. Jan. 5. Vol. 10. Р. 1328700. doi: 10.3389/fvets.2023.1328700.

29. Sprícigo J.F.W. et al. Effects of Different Maturation Systems on Bovine Oocyte Quality, Plasma Membrane Phospholipid Composition and Resistance to Vitrification and Warming // PLoS ONE. 2015. Vol. 10: e0130164. doi: 10.1371/journal.pone.0130164.

30. Ghanem N. et al. The anti-Müllerian hormone profile is linked with the in vitro embryo production capacity and embryo viability after transfer but cannot predict pregnancy outcome // Reprod. Domest. Anim. 2016. Vol. 51. Р. 301 – 310.

31. Oikawa T., Itahashi T., Numabe T. Improved embryo development in Japanese black cattle by in vitro fertilization using ovum pick-up plus intracytoplasmic sperm injection with dithiothreitol // J. Reprod. Dev. 2016. Vol. 62. Р. 11 – 16. doi: 10.1262/jrd.2015-067.

32. dos Santos G.M.G. et al. High numbers of antral follicles are positively associated with in vitro embryo production but not the conception rate for FTAI in Nelore cattle // Anim. Reprod. Sci. 2016. Vol. 165. Р. 17 – 21. doi: 10.1016/j.anireprosci.2015.11.024.

33. Monteiro F.M. et al. Beef donor cows with high number of retrieved COC produce more in vitro embryos compared with cows with low number of COC after repeated ovum pick-up sessions // Theriogenology. 2017. Vol. 90. Р. 54 – 58. doi: 10.1016/j.theriogenology.2016.11.002.

34. Sakagami N. et al. Production of Japanese Black calves by the transfer of embryos developed from in vitro-fertilized oocytes derived by ovum pick up and matured in culture with the mitogen-activated protein kinase kinase inhibitor U0126 // J. Vet. Med. Sci. 2019. Vol. 81. Р. 379 – 382. doi: 10.1292/jvms.18-0460.

35. Garcia S.M. et al. Synchronization of stage of follicle development before OPU improves embryo production in cows with large antral follicle counts // Anim. Reprod. Sci. 2020. Vol. 221. Р. 106601. doi: 10.1016/j.anireprosci.2020.106601.

36. Estrada-Cortés E. et al. Programming of postnatal phenotype caused by exposure of cultured embryos from Brahman cattle to colony-stimulating factor 2 and serum // J. Anim. Sci. 2021a. Vol. 99: skab180. doi: 10.1093/jas/skab180.

37. Estrada-Cortés E. et al. Choline acts during preimplantation development of the bovine embryo to program postnatal growth and alter muscle DNA methylation // FASEB J. 2021b. Vol. 35: e21926. doi: 10.1096/fj.202100991R.

38. Saleem M. et al. Effect of three schemes of ovum pick-up on the follicular dynamics, gene expression, and in-vitro developmental competence of oocytes in Sahiwal cattle // Reprod. Domest. Anim. 2022. Oct. Vol. 57 (10). Р. 1230 – 1243. doi: 10.1111/rda.14198.

39. Saleem M. et al. Influence of endometritis on the follicular dynamics, recovery, quality, gene expression, nuclear maturation and in-vitro developmental competence of oocytes in Sahiwal cattle // Reprod. Domest. Anim. 2023. Vol. 58. Р. 207 – 218. doi: 10.1111/rda.14138.

40. Tomita K. et al. Effects of short-term dietary supplementation on the number of ovarian follicles, quantity and quality of oocytes, and in vitro embryo production in Japanese Black cows // J. Reprod. Dev. 2023. Vol. 69. Р. 65 – 71. doi: 10.1262/jrd.2022-103.

41. Неаре W. The sexual season on mammals and the relation of the proestrum to menstruation // Quarterly journal of microscopical science. 1901. Vol. 44. Р.1 – 70.

42. Студенцов А.П. Ветеринарное акушерство и гинекология. М.: Сельхозгиз, 1953. 502 с.

43. Студенцов А.П. К учению о половом цикле у сельскохозяйственных животных // Сов. зоотехния. 1953. № 4. С. 69 – 78.

44. Грачев В.С. О некоторых теоретических вопросах в области воспроизводства сельскохозяйственных животных // Сборник науч. тр. по материалам междунар. науч.-практ. конф. «Научное обеспечение развития АПК в условиях импортозамещения». СПб.: СПбГАУ, 2020. Т. 1. С. 172 – 176.

45. Студенцов А.П. и др. Акушерство, гинекология и биотехника размножения животных. М.: Колосc, 2005. 512 с.

46. Нежданов А.Г. и др. Изменение пероксидного и эндокринного статуса телок в процессе становления половой и физиологической зрелости // Вестн. Рос. акад. с.-х. наук. 2012. № 3. С. 69 – 70.

47. Сарсадских А.А., Абрамов С.В. Регуляция воспроизводства крупного рогатого скота с помощью гормональных препаратов на основе бусерелина и D-клопростенола // Молоч. и мясн. скотоводство. 2015. № 3. С. 29 – 32.

48. Kanitz W. et al. Comparative aspects of follicular development, follicular and oocyte maturation and ovulation in cattle and pigs // Achieves of Animal Breeding, Dummerstorf. 2001. Vol. 44 (special issue). Р. 9 – 23.

49. Wilhelm K. Follicular dynamic and ovulation in cattle: A review // Archive Tierzucht, Dummerstorf. 2003. Vol. 46 (2). Р. 187 – 198.

50. Mossa F. et al. Inherent capacity of the pituitary gland to produce gonadotropins is not influenced by the number of ovarian follicles > or = 3 mm in diameter in cattle // Reprod. Fertil. Dev. 2010. Vol. 22. Р. 550 – 557.

51. Mossa F. et al. Low numbers of ovarian follicles >/=3 mm in diameter are associated with low fertility in dairy cows // J. Dairy Sci. 2012. Vol. 95. Р. 2355 – 2361.

52. Russe I. Oogenesis in cattle and sheep // Bibl. Anat. 1983. Vol. 24. Р. 77 – 92.

53. Erickson B.H. Development and senescence of the postnatal bovine ovary // J. Anim. Sci. 1966. Vol. 25. Р. 800– 805.

54. Evans A.C. et al. Effects of maternal environment during gestation on ovarian folliculogenesis and consequences for fertility in bovine offspring // Reprod. Domest. Anim. 2012. Vol. 47 (Suppl 4). Р. 31 – 37.

55. Sharma P. et al. Ovarian follicular dynamics in cattle: a comprehensive review // Clinical Theriogenology. 2026. 18. https://doi.org/10.58292/CT.v18.12843.

56. Гавриченко Н.И., Турчанова Л.Н. Особенности течения фолликулогенеза в период полового цикла в яичниках коров с различным уровнем плодовитости // Актуальные пробл. интенсив. развития животноводства. 2014. № 17 (2). С. 193 – 198.

57. Bó G.A., Baruselli P.S., Martínez M.F. Pattern and manipulation of follicular development in Bos indicus cattle // Anim. Reprod. Sci. 2003. Oct. 15. Vol. 78 (3-4). Р. 307 – 26. doi: 10.1016/s0378-4320(03)00097-6.

58. Sood P. et al. Effect of ovarian follicular wave pattern and endocrine characteristics on pregnancy outcome in cows // Reprod. Domest. Anim. 2022. Vol. 57 (3). Р. 321 – 332. doi: 10.1111/rda.14064.

59. Hadiya K.K. et al. Follicular dynamics during oestrous cycle in post pubertal and postpartum Gir cattle // Indian J. Anim. Reprod. 2016. Vol. 37 (1). Р. 1 – 4.

60. Imron M. et al. Follicular dynamics and repeatability of follicular wave development in Peranakan Ongole cattle // J. Ilmu Ternak dan Veteriner. 2016. Vol. 21. Р. 26 – 33. doi: 10.14334/jitv.v21i1.1349.

61. Muraya J. et al. Characterization of follicular dynamics in the Kenyan Boran cow // Int J. Vet. Sci. 2015. Vol. 4. Р. 206 – 210.

62. Noseir W.M. Ovarian follicular activity and hormonal profile during estrous cycle in cows: the development of 2 versus 3 waves // Reprod. Biol. Endocrinol. 2003. Jun. 21. Vol. 1. Р. 50. doi: 10.1186/1477-7827-1-50.

63. Satheshkumar S. et al. Comparative analysis of follicular and luteal dynamics in oestrous cycles of buffaloes and crossbred cattle // Buf Bull. 2012. Vol. 30. Р. 148 – 156. DOI: doi: 10.3168/jds.S0022-0302(06)72064-1.

64. Sakhong D. et al. Ovarian follicular patterns and hormonal profile in Thai native cattle (Bos indicus) // Thai J. Vet Med. 2011. Vol. 41. Р. 439 – 447. DOI: 10.56808/2985-1130.2335.

65. Gaur M., Purohit G.N. Follicular dynamics in Rathi (Bos indicus) cattle // Vet. Arhiv. 2007. Vol. 77. Р. 177 – 186.

66. Santos Filho A. et al. Ovarian follicular dynamics of five-eighths Girolando cows // Reprod. Domest. Anim. 2001. Vol. 36 (3-4). Р. 207 – 10. doi: 10.1046/j.1439-0531.2001.00300.x.

67. Кузьмич Р.Г. и др. Особенности функциональных нарушений яичников у молочных коров после родов и эффективность использования простагландиновой программы для индукции половой охоты // Ученые записки УО ВГАВМ. 2022. Т. 58 (2). С. 17 – 23. doi: 10.52368/2078-0109-58-2-23-26.

68. Brevini-Gandolfi T.A., Gandolfi F. The maternal legacy to the embryo: cytoplasmic components and their effects on early development // Theriogenology. 2001. Vol. 55. Р. 1255 – 1276.

69. Dieleman S.J. et al. Effects of in vivo prematuration and in vivo final maturation on developmental capacity and quality of pre-implantation embryos // Theriogenology. 2002. Vol. 57. Р. 5 – 20.

70. Seneda M.M. et al. Relationship between follicle size and ultrasound-guided transvaginal oocyte recovery // Anim. Reprod. Sci. 2001. Vol. 67. Р. 37 – 43.

71. Senger P.L. Female Cow Hormones: Description and Function // In: Pathways to pregnancy and parturition. 2005.

72. Lamb G.C. et al. Reproductive endocrinology and hormonal control of the estrous cycle // The Bovine Practitioner. 2010, Vol. 44. № 1. P. 18 – 26. doi: 10.21423/bovine-vol44no1p18-26.

73. Moorey S.E., Hessock E.A, Edwards J.L. Preovulatory follicle contributions to oocyte competence in cattle: importance of the ever-evolving intrafollicular environment leading up to the luteinizing hormone surge // J. Anim. Sci. 2022. Jul. 1. Vol. 100 (7): skac153. doi: 10.1093/jas/skac153.

74. Чинаров Р.Ю. Развитие технологии прижизненного получения ооцитов у коров: современное состояние и направления исследований: (обзор) // С.-х. биология. 2024. Т. 59. № 2. C. 194 – 220. doi: 10.15389/agrobiology.2024.2.194rus.

75. Чинаров Р.Ю., Луканина В.А. Влияние технических параметров на результативность прижизненного получения ооцитов у телок симментальской породы // Достижения науки и техники АПК. 2022. Т. 36. № 1. С. 46 – 50. doi: 10.53859/0235-2451_2022_36_1_46.

76. Чинаров Р.Ю. и др. Определение оптимальной стадии полового цикла для проведения трансвагинальной УЗИ-ассистированной пункции фолликулов у лактирующих коров генофондной тагильской породы // Молоч. и мясн. скотоводство. 2023. № 5. С. 24 – 27. doi: 10.33943/MMS.2023.50.14.004.

77. Hagemann L.J. et al. Development during single IVP of bovine oocytes from dissected follicles: interactive effects of estrous cycle stage, follicle size and atresia // Mol. Reprod. Dev. 1999. Vol. 53. Р. 451 – 458.

78. Hendriksen P.J. et al. Effect of different stages of the follicular wave on in vitro developmental competence of bovine oocytes // Theriogenology. 2004. Vol. 61. Р. 909 – 920.

79. Demissie T. et al. Effect of follicular ablation and gonadotropin priming on the recovery and quality of oocytes in Boran cows // Int J. Vet. Sci. Res. 2021. Vol. 7 (2). Р. 138 – 143. doi: 10.17352/ijvsr.000093.

80. Gonçalves G.D. et al. Relationship between the time of OPU and in vitro embryo production // Anim. Reprod. 2022. Vol. 19 (2 spe): e22077.

81. Pavlok A., Lucas-Hahn A., Niemann H. Fertilization and developmental competence of bovine oocytes derived from different categories of antral follicles // Mol. Reprod. Dev. 1992. Vol. 31. Р. 63 – 67.

82. Blondin P., Sirard M.A. Oocyte and follicular morphology as determining characteristics for developmental competence in bovine oocytes // Mol. Reprod. Dev. 1995. Vol. 41. Р. 54 – 62.

83. Lonergan P. et al. Effect of follicle size on bovine oocyte quality and developmental competence following maturation, fertilization, and culture in vitro // Mol. Reprod. Dev. 1994. Vol. 37. Р. 48 – 53.

84. Qi M. et al. Transvaginal ultrasound guided Ovum Pick-up (OPU) in cattle // J. Biomimetics, Biomaterials and Biomedical Engineering. 2013. Vol. 18. Р. 118.

85. Чинаров Р.Ю. и др. Результативность получения ооцитов коров при использовании различных временных режимов трансвагинальной пункции фолликулов // Достижения науки и техники АПК. 2020. Т. 34. № 2. С. 57 – 60. doi: 10.24411/0235-2451-2020-10212.

86. Голубец Л.В. Эффективность различных режимов использования доноров при получении эмбрионов крупного рогатого скота in vitro в системе трансвагинальной аспирации ооцитов (ТАО) // Ученые записки УО ВГАВМ. 2021. Т. 57. Вып. 2. С. 87 – 91. doi: 10.52368/2078-0109-2021-57-2-87-91.

87. Chaubal S.A. et al. Comparison of different transvaginal ovum pick-up protocols to optimise oocyte retrieval and embryo production over a 10-week period // Theriogenology. 2006. Vol. 65. Р. 1631 – 1648.

88. Lopes A.S. et al. Effect of days post-partum, breed and ovum pick- up scheme on bovine oocyte recovery and embryo development // Reproduction of Domestic Animals. 2006. Vol. 41. Р. 196 – 203.

89. Li F. et al. Collection of oocytes through transvaginal ovum pick-up for in vitro embryo production in Nanyang Yellow cattle // Reproduction of Domestic Animals. 2007. Vol. 42. Р. 666 – 670.

90. Чинаров Р.Ю., Луканина В.А., Сингина Г.Н. Влияние различной интенсивности сессий трансвагинальной пункции фолликулов яичников на прижизненное получение ооцитов у коров // Молоч. и мясн. скотоводство, 2023. № 3. С. 33 – 37. doi: 10.33943/MMS.2023.15.29.006.

91. Чинаров Р.Ю. и др. Влияние интервала между сеансами OPU на результативность получения ооцитов при интенсивном использовании доноров у крупного рогатого скота различных пород // Аграр. наука. 2025. № 4. С. 95 – 100. doi: 10.32634/0869-8155-2025-393-04-95-100.

92. Ongaratto F.L. et al. Effect of follicle wave synchronization and gonadotropin treatments on the number and quality of cumulus-oocyte complex obtained by ultrasound-guided ovum pick-up in beef cattle // Anim. Reprod. 2015. Vol. 12 (4). Р. 876 – 883.

93. Imai K. et al. Follicular growth, subsequent Ovum Pick-Up, and dominant follicle removal in cows // Reproduction, Fertility and Development. 2006. Vol. 18. Р. 246 – 246. doi: 10.1071/RDv18n2Ab277.

94. Fernandes C.A.D.C. et al. Hormonal protocols for in vitro production of Zebu and taurine embryos // Pesq. Agropec. Bras. 2014. Vol. 49. Р. 813 – 817.

95. Cavalieri F.L.B. et al. Improvement of bovine in vitro embryo production by ovarian follicular wave synchronization prior to ovum pick-up // Theriogenology. 2018. Vol. 117. Р. 57 – 60. doi: 10.1016/j.theriogenology.2017.11.026.

96. Caccia M., Bo G.A. Follicle wave emergence following treatment of CIDR-B implanted beef heifers with estradiol benzoate and progesterone // Theriogenology. 1998. Vol. 49. Р. 34. (abstract).

97. Araujo R.R. et al. Role of follicular estradiol-17beta in timing of luteolysis in heifers // Biol. Reprod. 2009. Vol. 81. Р. 426 – 437.

98. Hidaka T. et al. Estradiol benzoate treatment before ovum pick-up increases the number of good quality oocytes retrieved and improves the production of transferable embryos in Japanese Black cattle // Veterinary and Animal Science. 2018. Vol. 5. Р. 1 – 6. DOI: 10.1016/j.vas.2018.02.001.

99. Taghizadeh E. et al. Estrogens improve the pregnancy rate in cattle: A review and meta-analysis // Theriogenology. 2024. May. Vol. 220. Р. 35 – 42. doi: 10.1016/j.theriogenology.2024.03.005.

100. Bihon A., Assefa A., González-Redondo P. Prostaglandin based estrus synchronization in cattle: A review // Cogent Food & Agriculture. 2021. Vol. 7 (1). https://doi.org/10.1080/23311932.2021.1932051.

101. Bó G.A., Mapletoft R.J. Historical perspectives and recent research on superovulation in cattle // Theriogenology. 2014. Vol. 81. Р. 38 – 48.

102. Murphy B.D., Martinuk S.D. Equine chorionic gonadotropin // Endocr. Rev. 1991. Vol. 12. Р. 27 – 44.

103. Moor R., Kruip T., Green D. Intraovarian control of folliculogenesis: limits to superovulation? // Theriogenology. 1984. Vol. 21. Р. 103 – 116.

104. Сингина Г.Н., Чинаров Р.Ю., Шедова Е.Н. Влияние количества повторяющихся процедур OPU на эффективность получения in vitro эмбрионов у ярославской породы крупного рогатого скота // Достижения науки и техники АПК. 2023. № 11 (37). С. 59 – 64. doi: 10.53859/02352451_2023_37_11_59.

105. Чинаров Р.Ю., Луканина В.А., Сингина Г.Н. Влияние периода серии OPU на паттерн развития овариальных фолликулов и извлечение ооцитов у телок-доноров голштинской породы // Достижения науки и техники АПК, 2025. Т. 39. №. 2. С. 63 – 68. doi: 10.53859/02352451_2025_39_2_63.

106. Kang S.-S. et al. Recovery Efficiency of Cumulus Oocyte Complexes (COCs) according to Collection Frequency for Ovum Pick-up (OPU) Method in Hanwoo Cow // J. of Animal Reproduction and Biotechnology. 2019. Vol. 34 (4). Р. 300 – 304. DOI: 10.12750/JARB.34.4.300.

107. Mazzoni G. et al. Identification of potential biomarkers in donor cows for in vitro embryo production by granulosa cell transcriptomics // PLoS ONE. 2017. Vol. 12 (4): e0175464. doi: 10.1371/journal.pone.0175464.

108. Чинаров Р.Ю. и др. Связь биохимических показателей сыворотки крови с фолликулярным паттерном яичников и результативностью OPU у телок-доноров (Bos Taurus L.) истобенской породы // С.-х. биология. 2024. Т. 59. № 4. С. 704 – 720. doi: 10.15389/agrobiology.2024.4.704rus.

109. Kowsar R. et al. Multistep analysis reveals the relationship between blood indices at the time of ovum pick-up and in vitro embryo production in heifers // Theriogenology. 2021. Vol. 159. Р. 153 – 164. doi: 10.1016/j.theriogenology.2020.10.026.

110. Leroy J.L.M.R. et al. Nutrition and maternal metabolic health in relation to oocyte and embryo quality: critical views on what we learned from the dairy cow model // Reprod. Fertil. Dev. 2015. Vol. 27 (4). Р. 693 – 703. (doi: 10.1071/RD14363.

111. Smuts M.P. et al. Serum albumin concentration of donor cows as an indicator of developmental competence of oocytes // Theriogenology. 2019. Vol. 125. Р. 184 – 92. doi: 10.1016/j.theriogenology.2018.09.002.

112. Kang S.S. et al. Nutrient requirements in Hanwoo cows with artificial insemination: effects on blood metabolites and embryo recovery rate // J. Anim. Sci. Technol. 2020. Jul. Vol. 62 (4). Р. 449 – 459. doi: 10.5187/jast.2020.62.4.449.

113. Rhoads M.L. et al. Detrimental effects of high plasma urea nitrogen levels on viability of embryos from lactating dairy cows // Anim. Reprod. Sci. 2006. Vol. 91. Р. 1 – 10. doi: 10.1016/j.anireprosci.2005.02.009.

114. Santos P. et al. Effects of plasma urea nitrogen levels on the bovine oocyte ability to develop after in vitro fertilization // Reprod. Domest. Anim. 2009. Vol. 44. Р. 783 – 787. doi: 10.1111/j.1439-0531.2008.01075.x.

115. Liu H. et al. Fibronectin protected bovine preantral follicles from the deleterious effects of Kisspeptin // Theriogenology. 2020. Vol. 161. P. 301 – 312. doi: 10.1016/j.theriogenology.2020.12.017.

116. Pradhan R. et al. Effect of total cholesterol, glucose and blood urea nitrogen on embryo quality in post- partum superovulated suckling Japanese Black cattle // Reprod. Med. Biol. 2008. Vol. 7. Р. 55 – 62. https://doi.org/10.1111/j.1447-0578.2008.00201.x.

117. Wathes D.C. et al. Influence of negative energy balance on cyclicity and fertility in the high producing dairy cow // Theriogenology. 2007. Vol. 68. Р. S232 – 41. doi: 10.1016/j.theriogenology.2007.04.006.

118. Чинаров Р.Ю. Репродуктивные биомаркеры коров – современное состояние исследований и перспективы // С.-х. биология. 2025. Т. 60. № 4. С. 581 – 603. doi: 10.15389/agrobiology.2025.4.581rus.

119. Nawaz M. et al. Exogenous progesterone-dependent modulation in the follicular dynamics of Bos indicus cattle undergoing repeated ovum pick-up sessions // Reprod in Domestic Animals. 2022. Vol. 57 (1). Р. 55 – 63. doi: 10.1111/rda.14028.

120. Pfeifer L.F.M. et al. Effect of circulating progesterone on in vitro developmental competence of bovine oocytes // Anim. Reprod. 2009. Vol. 6. № 3. Р. 473 – 480.

121. Sakaguchi K. et al. Relationships between the antral follicle count, steroidogenesis, and secretion of follicle-stimulating hormone and anti-Müllerian hormone during follicular growth in cattle // Reprod. Biol. Endocrinol. 2019. Vol. 17. № 1. P. 88. doi: 10.1186/s12958-019-0534-3.

122. Sood P. et al. Preovulatory follicle characteristics and oocyte competence in repeat breeder dairy cows // J. Dairy Sci. 2017. Vol. 100. № 11. P. 9372 – 9381. doi: 10.3168/jds.2017-12973.

123. Araki N. et al. Relationships among follicular fluid Estradiol-17β concentration, morphology of cumulus- oocyte complex and developmental capacity of individually matured, fertilized and cultured bovine oocytes in vitro // J. of Reproduction and Development. 1998. Vol. 44. № 4. P. 359 – 365.

124. Taheri F. et al. The determination of estradiol to cumulus oocyte complex (COC) number ratio: does it predict the outcomes of ART cycles? // J. Reprod. Infertil. 2020. Vol. 21. № 1. P. 11 – 16.

125. Malathi A., Balakrishnan S., Lanshmi B.S. Correlation between estradiol levels on day of HCG trigger and the number of mature follicles, number of oocytes retrieved, and the number of mature oocytes (M2) after oocyte aspiration in ICSI cycles // Middle East Fertil. Soc. J. 2021. Vol. 26. Р. 34. doi: 10.1186/s43043-021-00080-5.

126. Berger M. et al. Estradiol to progesterone ratio is not a predictor of oocyte maturity at time of ovulation trigger // J. Assist. Reprod. Genet. 2022. Vol. 39. P. 1667 – 1672. doi: 10.1007/s10815-022-02491-3.

127. Loumaye E. et al. Assessment of the role of serum luteinizing hormone and estradiol response to follicle-stimulating hormone on in vitro fertilization treatment outcome // Fertil Steril. 1997. Vol. 67. № 5. P. 889 – 899.

128. Orvieto R. et al. The influence of estradiol/follicle and estradiol/oocyte ratios on the outcome of controlled ovarian stimulation for in vitro fertilization // Gynecological Endocrinology. 2007. Vol. 23. № 2. P. 72 – 75. doi: 10.1080/09513590601137137.

129. Aslih N. et al. More is not always better-lower estradiol to mature oocyte ratio improved IVF outcomes // Endocr. Connect. 2021. Vol. 10. № 2. P. 146 – 153. doi: 10.1530/EC-20-0435.x.

130. Li S. et al. High estradiol per retrieved oocyte level predicts poor IVF outcome in patients with less than 15 oocytes // Fertility and Sterility. 2021. Vol. 166. № 3. E. 240. doi: 10.1016/j.fertnstert.2021.07.646.

131. Vaughan D. et al. Serum estradiol : oocyte ratio as a predictor of reproductive outcome: an analysis of data from >9000 IVF cycles in the Republic of Ireland // J. of Assisted Reproduction and Genetics. 2016. Vol. 33. № 4. P. 481 – 488. doi: 10.1007/s10815-016-0664-x.

132. Argov N., Arav A., Sklan D. Number of oocytes obtained from cows by OPU in early, but not late lactation increased with plasma insulin and estradiol concentrations and expression of mRNA of the FSH receptor in granulosa cells // Theriogenology. 2004. Vol. 61. № 5. Р. 947 – 962. doi: 10.1016/j.theriogenology.2003.07.014.

133. Чинаров Р.Ю. и др. Отношение концентрации экстрадиола-17β в сыворотке крови к числу ооцитов как предиктор результативности OPU у телок-доноров истобенской породы // Ветеринария и кормление. 2025. № 1. С. 87 – 91. doi: 10.30917/ATT-VK-1814-9588-2025-1-18.

134. Haughian J.M. et al. Relationships between FSH patterns and follicular dynamics and the temporal associations among hormones in natural and GnRH-induced gonadotropin surges in heifers // Reproduction. 2004. Vol. 127. Р. 23 – 33.

135. Ireland J.J. et al. Follicle numbers are highly repeatable within individual animals but are inversely correlated with FSH concentrations and the proportion of good-quality embryos after ovarian stimulation in cattle // Hum. Reprod. 2007. Vol. 22. Р. 1687 – 1695.

136. Singh J. et al. A simple ultrasound test to predict the superstimulatory response in cattle // Theriogenology. 2004. Vol. 62. Р. 227 – 243.

137. Umer S. et al. Could It Be Used as A Biomarker for Fertility and Superovulation in Domestic Animals? // Genes. 2019. 10: 1009. doi: 10.3390/genes10121009.

138. Dewailly D. et al. The physiology and clinical utility of anti-Müllerian hormone in women // Hum. Reprod. Update. 2014. Vol. 20. P. 370 – 385. doi: 10.1093/humupd/dmt062.

139. Durlinger A.L. et al. Control of primordial follicle recruitment by anti-Mullerian hormone in the mouse ovary // Endocrinology. 1999. Vol. 140. P. 5789 – 5796.

140. Durlinger A.L.L. et al. Anti-Mullerian hormone attenuates the effects of FSH on follicle development in the mouse ovary // Endocrinology. 2001. Vol. 142. P. 4891–4899.

141. Monniaux D. et al. Regulation of anti-Müllerian hormone production in domestic animals // Reprod. Fertil. Dev. 2012. Vol. 25. Р. 1–16. doi: 10.1071/RD12270.

142. El-Sheikh Ali H. et al. Plasma anti-Müllerian hormone as a biomarker for bovine granulosa-theca cell tumors: Comparison with immunoreactive inhibin and ovarian steroid concentrations // Theriogenology. 2013. Vol. 80. P. 940–949. doi: 10.1016/j.theriogenology.2013.07.022.

143. Rico C. et al. Anti-Müllerian hormone is an endocrine marker of ovarian gonadotropin-responsive follicles and can help to predict superovulatory responses in the cow // Biol. Reprod. 2009. Vol. 80. Р. 50–59.

144. Pfeiffer K.E., Jury L.J., Larson J.E. Determination of anti-Müllerian hormone at estrus during a synchronized and a natural bovine estrous cycle // Domest. Anim. Endocrinol. 2014. Vol. 46. P. 58–64. doi: 10.1016/j.domaniend.2013.05.004.

145. Ireland J.L.H. et al. Antral follicle count reliably predicts number of morphologically healthy oocytes and follicles in ovaries of young adult cattle // Biol. Reprod. 2008. Vol. 79. P. 1219–1225. doi: 10.1095/biolreprod.108.071670.

146. Batista E.O. et al. Plasma antimullerian hormone as a predictor of ovarian antral follicular population in Bos indicus (Nelore) and Bos taurus (Holstein) heifers // Reprod. Domest. Anim. 2014. Vol. 49. № 3. P. 448–452. doi: 10.1111/rda.12304.

147. Baldrighi J.M. et al. Anti-Mullerian Hormone Concentration and Antral Ovarian Follicle Population in M urrah H eifers Compared to Holstein and Gyr Kept Under the Same Management // Reprod. Domest. Anim. 2014. Vol. 49. Р. 1015–1020.

148. Stojsin-Carter A. et al. Systemic and local anti-Mullerian hormone reflects differences in the reproduction potential of Zebu and European type cattle // Animal Reproduction Science. 2016. Vol. 167. Р. 51–58. doi: 10.1016/j.anireprosci.2016.02.003.

149. Santa Cruz R., Cushman R.A., Viñoles C. Antral follicular count is a tool that may allow the selection of more precocious Bradford heifers at weaning // Theriogenology. 2018. Vol. 119. P. 35 – 42. doi: 10.1016/j.theriogenology.2018.06.010.

150. Nawaz M.Y. et al. Genomic heritability and genome-wide association analysis of anti-Müllerian hormone in Holstein dairy heifers // J. Dairy Sci. 2018. Vol. 101. P. 8063 – 8075. doi: 10.3168/jds.2018-14798.

151. Чинаров Р.Ю. и др. Связь уровня антимюллерова гормона в сыворотке крови с числом фолликулов и извлеченных ооцитов у лактирующих коров-доноров тагильской породы // Достижения науки и техники АПК. 2024. Т. 38. №. 4. С. 51–56. doi: 10.53859/02352451_2024_38_4_51.


Рецензия

Для цитирования:


Чинаров Р.Ю., Позябин С.В., Багиров В.А. Факторы эффективности использования доноров
 для получения ооцитов у крупного рогатого скота. Успехи наук о животных. 2026;(1):36-57. https://doi.org/10.25687/3034-493X.2026.6.1.003

For citation:


Chinarov R.Yu., Pozyabin S.V., Bagirov V.A. Factors contributing to the effective use of donors for oocyte collection in cattle. Ernst Journal of Animal Science. 2026;(1):36-57. (In Russ.) https://doi.org/10.25687/3034-493X.2026.6.1.003

Просмотров: 146

JATS XML


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 3034-493Х (Online)