Изменение показателей биохимического и клинического статуса крови коров при некоторых метаболических и хозяйственно-значимых нарушениях

Кетоз, ацидоз и мастит у коров часто протекают в субклинической форме без видимых признаков воспаления, а потому изменения биохимических и гематологических показателей могут помочь их своевременно диагностировать. О наличии различных форм кетоза у молочных коров могут свидетельствовать изменения показателей азотистого обмена, проявляющиеся в повышении уровня общего белка за счет глобулиновой фракции наряду с гипоальбуминемией и снижением концентрации мочевины. Сообщается о нарушениях углеводно-липидного обмена, а именно повышении уровня триглицеридов, ЛПВП и снижении холестерина и глюкозы. Изменения в минеральном обмене обусловлены, в основном, снижением уровня кальция, фосфора, магния и щелочного резерва, гормонального и антиоксидантного статуса организма. При ацидозах у молочных коров происходят негативные изменения антиоксидантного статуса, выраженные в снижении активности ферментов антиоксидантной защиты (каталазы, супероксиддисмутазы) и повышении уровня МДА. Сообщается об увеличении в крови триглицеридов и кетоновых тел. Приводятся данные об увеличении активности АЛТ, ACT, ЛДГ, липазы и уровня лактата. При ацидозе наблюдается гипоальбуминемия и гипокальциемия наряду с увеличением фосфора. Основные изменения при маститах касаются клинических показателей крови и характеризуются повышением числа лейкоцитов, снижением эритроцитов и гемоглобина. Необходимо дальнейшее расширение и изучение гормональных и антиоксидантных показателей крови при метаболических нарушениях в организме, связи биохимических, в том числе и антиоксидантных, маркеров крови и состава молока.

1. Shabalina T., Yin T., König S. Influence of common health disorders on the length of productive life and stayability in German Holstein cows // J. Dairy Sci. 2020. Vol. 103. № 1. P. 583 – 596. doi: 10.3168/jds.2019-16985.

2. Bittante G. Effects of breed, farm intensiveness, and cow productivity on infrared predicted milk urea // J. Dairy Sci. 2022. Vol. 105. № 6. P. 5084 – 5096. doi: 10.3168/jds.2021-21105.

3. Luke T.D.W. et al. Metabolic profiling of early-lactation dairy cows using milk mid-infrared spectra // J. Dairy Sci. 2019. Vol. 102. № 2. P. 1747 – 1760. doi: 10.3168/jds.2018-15103.

4. McArt J.A.A., Nydam D.V., Oetzel G.R. Dry period and parturient predictors of early lactation hyperketonemia in dairy cattle // J. Dairy Sci. 2013. Vol. 96. № 1. P. 198 – 209. doi: 10.3168/jds.2012-5681.

5. Wathes D.C. et al. Influence of negative energy balance on cyclicity and fertility in the high producing dairy cow // Theriogenology. 2007. Vol. 68. P. S232 – S241. doi:10.1016/j.theriogenology.2007.04.006-17475319.

6. LeBlanc S.J. Interactions of metabolism, inflammation, and reproductive tract health in the postpartum period in dairy cattle // Reproduction in Domestic Animals. 2012. Vol. 47. P. 18 – 30. doi: 10.1111/j.1439-0531.2012.02109.x22913557.

7. Vanholder T. et.al. Risk factors for subclinical ketosis and association with production parameters in dairy cows in the Netherlands // J. Dairy Sci. 2015. Vol. 98. P. 880 – 888. doi: 10.3168/jds.2014-8362.

8. van Knegsel A.T.M. et al. Effects of shortening the dry period of dairy cows on milk production, energy balance, health, and fertility: A systematic review // The Veterinary Journal. 2013. Vol. 198. № 3. P. 707 – 713. doi: 10.1016/j.tvjl.2013.10.005.

9. Hubner A. et al. Characterization of metabolic profile, health, milk production, and reproductive outcomes of dairy cows diagnosed with concurrent hyperketonemia and hypoglycemia // J. Dairy Sci. 2022. Vol. 105. № 11. P. 9054 – 9069. doi: 10.3168/jds.2021-2132736114055.

10. Horst E.A., Kvidera S.K., Baumgard L.H. Invited review: The influence of immune activation on transition cow health and performance—A critical evaluation of traditional dogmas // J. Dairy Sci. 2021. Vol. 104. № 8. P. 8380 – 8410. doi: 10.3168/jds.2021-2033034053763.

11. Alemu T.W. et al. Reproductive performance of lactating dairy cows with elevated milk β-hydroxybutyrate levels during first 6 weeks of lactation // J. Dairy Sci. 2023. Vol. 106. № 7. P. 5165 – 5181. doi: 10.3168/jds.2022-2240637225583.

12. Andersson L. Subclinical ketosis in dairy cows // Veterinary clinics of north america: Food animal practice. 1988. Vol. 4. № 2. P. 233 – 251. doi: 10.1016/s0749-0720(15)31046-x.

13. Duffield T. Subclinical ketosis in lactating dairy cattle // Veterinary clinics of north america: Food animal practice. 2000. Vol. 16. № 2. P. 231 – 253. doi: 10.1016/S0749-0720(15)30103-1.

14. Il Y. et al. Changes in blood biochemical parameters in highly productive cows with ketosis // Veterinary World. 2024. Vol. 17. № 5. P. 1130 – 1138. doi: 10.14202/vetworld.2024.1130-1138.

15. Marutsova V., Lazarov L., Kavardzhiev P. Changes in lipid and mineral profiles in cows with subclinical and clinical ketosis // Tradition & Modernity in Veterinary Medicine. 2024. Vol. 9. № 1.

16. Белоусов А.И. и др. Метаболические признаки алиментарного кетоза у высокопродуктивных коров // Труды ВИЭВ. 2018. Т. 80. № 1. С. 88 – 100. EDN VONDJZ.

17. Эленшлегер А.А., Требухов А.В., Казакова О.Г. Некоторые биохимические показатели крови у коров при субклиническом кетозе // Вестн. Алтайского ГАУ. 2014. № 10 (120). С. 96 – 99. EDN SXROON.

18. Yenilmez K., Atalay H., Doğan H. Effects of Subclinical Ketosis and Subclinical Hypocalcemia on Some Bıochemical Parameters and Reproductıon in Cows // Indian Journal of Animal Research. 2025. Vol. 59. № 7.

19. Ghaheri S.M.H., Ghasemian S.O., Pedram B. Determining the Relationship Between Oxidative Stress and Subclinical Ketosis in Dairy Cows // Research on Animal Production. 2025. Vol. 16. № 1. P. 85 – 98. doi: 10.61186/rap.16.1.85.

20. Лавин Н. Эндокринология: учеб.-метод. пособие / Н. Лавин, В.И. Кандрора, Э.А. Антуха, Т.Г. Горлина. М.: Практика, 1999. C. 1128.

21. Кисленко В.Н. Ветеринарная микробиология и иммунология: учеб.-метод. пособие / В.Н. Кисленко, Н.М. Колычев. М.: КолосС, 2007. 224 с

22. Moradi S. et al. The association of some blood metabolites and NF-κB gene expression with subclinical ketosis in Holstein dairy cows during the transition period. 2022. Vol. 16. № 2. P. fa111 – fa126. doi: 10.30495/JVCP.2022.1937013.1316.

23. Huang Y. et al. Plasma and milk metabolomics profiles in dairy cows with subclinical and clinical ketosis // J. Dairy Sci. 2024. Vol. 107. № 8. P. 6340 – 6357. doi: 10.3168/jds.2023-24496.

24. Харитонов Е.Л. Лечение субклинических кетозов высокопродуктивных молочных коров // Ветеринария, зоотехния и биотехнология. 2018. № 5. С. 65 – 70. EDN XRLBAD.

25. Харитонов Е.Л., Березин А.С., Лысова Е.А. Сравнительные исследования средств профилактики кетозов // Актуальные проблемы интенсивного развития животноводства. 2017. № 20 (2). С. 288 – 294. EDN YNITZY.

26. Фомичёв Ю.П., Довыденков Г.В. Комплексное применение холинхлорида, L-карнитина и экостимула-2 в профилактике кетоза у высокопродуктивных молочных коров // Изв. Оренбургского ГАУ. 2010. Т. 4. № 28-1. С. 244 – 248. EDN NBKDGB.

27. Рядчиков В.Г. и др. Оптимизация уровня концентратов в рационе коров в переходный период // Зоотехния. 2012. № 1. С. 10 – 12.

28. Тумилович Г.А., Малашко В.В. Определение степени антенатального недоразвития новорожденных телят в зависимости от уровня нарушения процессов метаболизма у коров-матерей // Вестн. Белорусской ГСХА. 2009. № 1. С. 97 – 100.

29. Mu Y.Y. et al. Gene function adjustment for carbohydrate metabolism and enrichment of rumen microbiota with antibiotic resistance genes during subacute rumen acidosis induced by a high-grain diet in lactating dairy cows // J. Dairy Sci. 2021. Vol. 104. № 2. P. 2087 – 2105. doi: 10.3168/jds.2020-19118.

30. Kleen J.L., Cannizzo C. Incidence, prevalence and impact of SARA in dairy herds // Animal Feed Science and Technology. 2012. Vol. 172. № 1-2. P. 4 – 8. doi: 10.1016/j.anifeedsci.2011.12.003.

31. Zhang R. et al. Comparative metabolome analysis of ruminal changes in Holstein dairy cows fed low-or high-concentrate diets // Metabolomics. 2017. Vol. 13. № 6. Article 74. doi: 10.1007/s11306-017-1204-0.

32. Zhang H. et al. Subacute ruminal acidosis downregulates FOXA2, changes oxidative status, and induces autophagy in the livers of dairy cows fed a high-concentrate diet // J. Dairy Sci. 2023. Vol. 106. № 3. P. 2007 – 2018. doi: 10.3168/jds.2022-22222.

33. Xu L. et al. Morphological adaptation of sheep’s rumen epithelium to high-grain diet entails alteration in the expression of genes involved in cell cycle regulation, cell proliferation and apoptosis // J. of Animal Science and Biotechnology. 2018. Vol. 9. № 1. Article 32. doi: 10.1186/s40104-018-0247-z.

34. Mu Y. et al. Multi-omics analysis revealed coordinated responses of rumen microbiome and epithelium to high-grain-induced subacute rumen acidosis in lactating dairy cows // Msystems. 2022. Vol. 7. № 1. Article e01490-21. doi: 10.1128/msystems.01490-21.

35. Лаптев Г.Ю. Лактатный ацидоз? Причина–в рационе // Животноводство России. 2007. № 4. С. 41 – 42. EDN IPJRJG.

36. Маматова Н. Б., Лысенко А. А. Ацидоз коров в условиях промышленного животноводства. Особенности профилактики и лечения // Перспективные научные исследования: опыт, проблемы и перспективы развития. Уфа, 2023. С. 50 – 53.

37. Humer E. et al. Signals for identifying cows at risk of subacute ruminal acidosis in dairy veterinary practice // Journal of animal physiology and animal nutrition. 2018. Vol. 102. № 2. P. 380 – 392. doi: 10.1111/jpn.12850.

38. Duffield T. et al. Comparison of techniques for measurement of rumen pH in lactating dairy cows // J. Dairy Sci. 2004. Vol. 87. № 1. P. 59 – 66. doi: 10.3168/jds.S0022-0302(04)73142-2.

39. Zschiesche M. et al. The milk fat-to-protein ratio as indicator for ruminal pH parameters in dairy cows: a meta-analysis // Dairy. 2020. Vol. 1. № 3. P. 259 – 268. doi: 10.3390/dairy1030017.

40. Позябин С.В. и др. Метаболический ацидоз при патологиях дистального отдела конечностей у лактирующих коров // Ветеринария. 2024. № 5. С. 76 – 78.

41. Рыболовская В.В. Гематологические показатели у молочного скота при ацидозе рубца // Научн. журн. молодых ученых. 2021. № 2 (23). С. 10 – 14.

42. Morar D. et al. Paraclinical changes occurring in dairy cows with spontaneous subacute ruminal acidosis under field conditions // Animals. 2022. Vol. 12. № 18. Article 2466. doi: 10.3390/ani12182466.

43. Katsoulos P.D. et al. Investigation of Effects of Low Ruminal pH Values on Serum Concentrations of Macrominerals, Trace Elements, and Vitamins and Oxidative Status of Dairy Cows // Ruminants. 2025. Vol. 5. № 3. Article 35. doi: 10.3390/ruminants5030035.

44. Qi W.P. et al. Plasma biochemical indexes and metabolomics profile changes of dairy cows with subacute ruminal acidosis. 2021. Vol. 30. № 6. P. 41 – 150.

45. Jung M. et al. Effects of subclinical mastitis on automatic milking system data, hematological and biochemical parameters, and milk composition in Holstein cows // Animal Bioscience. 2024. Vol. 38. № 1. Article 166. doi: 10.5713/ab.24.0460.

46. Yehia S.G. et al. Evaluation of oxidative stress, compositional and biochemical changes in milk and serum of cows with subclinical mastitis // Comparative Clinical Pathology. 2024. Vol. 33. № 4. P. 643 – 652. doi: 10.1007/s00580-024-03582-6.

47. Saleh N. et al. Evaluation of Changes in Hemato-Biochemical, Inflammatory, and Oxidative Stress Indices as Reliable Diagnostic Biomarkers for Subclinical Mastitis in Cows // Alexandria Journal of Veterinary Sciences. 2022. Vol. 72. № 2. P. 23 – 34. doi: 10.5455/ajvs.140786.

48. Pegolo S. et al. Blood biochemical changes upon subclinical intramammary infection and inflammation in Holstein cattle // J. Dairy Sci. 2023. Vol. 106. № 9. P. 6539 – 6550. doi: 10.3168/jds.2022-23155.

49. Yanthi N.D. et al. Expression of cytokine and chemokine gene families from the blood of dairy cattle infected with mastitis // AIP Conference Proceedings. AIP Publishing LLC, 2024. Vol. 2970. № 1. Article 050007. doi: 10.1063/5.0216310.

50. Sadat A. et al. Immunological and oxidative biomarkers in bovine serum from healthy, clinical, and sub-clinical mastitis caused by Escherichia coli and Staphylococcus aureus infection // Animals. 2023. Vol. 13. № 5. Article 892. doi: 10.3390/ani13050892.

51. Камышанов А.С. Изучение биохимических и морфологических показателей крови коров в различные периоды лактации при заболевании маститом // Междунар. науч.-исслед. журн. 2021. № 3-2 (105). С. 48 – 52. doi: 10.23670/IRJ.2021.105.3.033.

52. Ирхина В.К., Остякова М.Е. Морфологические и биохимические показатели крови у коров с субклиническим маститом в новотельный период // Вестн. аграр. науки. 2024. № 4 (109). С. 30 – 34. doi: 10.17238/issn2587-666X.2024.4.30.

53. Stanojević J. et al. Assessment of mastitis patterns in Serbian dairy cows: blood serum metabolic profile and milk composition parameters // Pathogens. 2023. Vol. 12. № 11. Article 1349. doi: 10.3390/pathogens12111349.

54. Зубова Т.В. и др. Биохимические и морфологические показатели крови коров с субклинической формой мастита // Вестн. Новосибирского ГАУ. 2023. № 2. С. 181 – 189. doi: 10.31677/2072-6724-2023-67-2-181-189.